Find research datasets worth reusing

FIG. 2 in Методика подготовки раковин глохидиев (Bivalvia, Unionidae) длЯ работы на сканируюЩем Электронном микроскопе

FIG. 2. Comparison of the external microsculpture of glochidia after long-time fixation by 75% ethanol (A) and 10% formalin (B). A. Sinanodonta schrenkii (Razdolnaya river, Primorsky Krai, collected VI.1999). B. Sinanodonta calipygos (environs of Kyoto, Honshu Island, Japan, collected V.1982). Scale bar 2 μm. Zeiss EVO 40 microscope, sputter coating with chromium.

РИС. 5. ЗагрЯЗнение готовых обраЗцов длЯ СЭМ при длительном хранении в негерметичных условиЯх (A–C) либо при хранении проШедШих процедуру мацерированиЯ беЗ последуюЩего обеЗЗараживаниЯ (D, E). A–С. Бактерии на поверхности глохидиев (Nodularia douglasiae, р. ИлистаЯ, бассейн оЗ. Ханка, Приморский кр.). А. ВнеШний вид глохидиЯ, основное ЗагрЯЗнение на створке в верхней части фото. В. Крючок глохидиЯ, основное ЗагрЯЗнение в левой части фото. С. Створка, вид иЗнутри. D. Единичные бактерии на створке глохидиЯ, вид иЗнутри (Kunashiria japonica, оЗ. Утиное, о-в Зелёный, Курильские о-ва). E. Гифы гриба на створке глохидиЯ, вид на наружную пору (Beringiana beringiana, оЗ. АЗабачье, Камчатка). МасШтаб 50 мкм (А, C), 10 мкм (В, D), 1 мкм (Е). Микроскопы Zeiss MERLIN (А, B, C, E), Zeiss EVO 40 (D), напыление хромом (А–С), Золотом (D), углеродом (Е). in Методика подготовки раковин глохидиев (Bivalvia, Unionidae) длЯ работы на сканируюЩем Электронном микроскопе

РИС. 5. ЗагрЯЗнение готовых обраЗцов длЯ СЭМ при длительном хранении в негерметичных условиЯх (A–C) либо при хранении проШедШих процедуру мацерированиЯ беЗ последуюЩего обеЗЗараживаниЯ (D, E). A–С. Бактерии на поверхности глохидиев (Nodularia douglasiae, р. ИлистаЯ, бассейн оЗ. Ханка, Приморский кр.). А. ВнеШний вид глохидиЯ, основное ЗагрЯЗнение на створке в верхней части фото. В. Крючок глохидиЯ, основное ЗагрЯЗнение в левой части фото. С. Створка, вид иЗнутри. D. Единичные бактерии на створке глохидиЯ, вид иЗнутри (Kunashiria japonica, оЗ. Утиное, о-в Зелёный, Курильские о-ва). E. Гифы гриба на створке глохидиЯ, вид на наружную пору (Beringiana beringiana, оЗ. АЗабачье, Камчатка). МасШтаб 50 мкм (А, C), 10 мкм (В, D), 1 мкм (Е). Микроскопы Zeiss MERLIN (А, B, C, E), Zeiss EVO 40 (D), напыление хромом (А–С), Золотом (D), углеродом (Е).

РИС. 3. Примеры дефектов глохидиев при работе на СЭМ. A, B. НаружнаЯ поверхность раковины глохидиЯ беЗ верхнего слоЯ, раЗруШенного иЗ-За долгой очистки в растворе Щелочи (Anodonta anatina (=Colletopterum), р. Обь, НовосибирскаЯ обл.). C. ТреЩины на раковине глохидиЯ вследствие иЗлиШнего высуШиваниЯ перед напылением (Middendorffinaia mongolica, р. Артёмовка, Приморский кр.). D. ПоврежденнаЯ микроскульптура наружного слоЯ глохидиЯ иЗ-За недостаточного обеЗвоживаниЯ перед напылением (Anodonta anatina, р. Москва). E. «Замыленность» микроскульпуры наружной поверхности глохидиЯ иЗ-За напылениЯ на недостаточно просуШенные раковины (Sinanodonta schrenkii, р. ИлистаЯ, бассейн оЗ. Ханка, Приморский кр.). F. Поврежденный, сморЩенный наружный слой раковины глохидиЯ иЗ-За пересуШиваниЯ перед напылением (Kunashiria japonica, оЗ. Чухуненко, Приморский кр.). МасШтаб 1 мкм (A, B), 5 мкм (C), 10 мкм (D, E, F). Микроскопы Zeiss MERLIN (A–D), Zeiss EVO 40 (E, F), напыление хромом (А–Е), углеродом (F). in Методика подготовки раковин глохидиев (Bivalvia, Unionidae) длЯ работы на сканируюЩем Электронном микроскопе

РИС. 3. Примеры дефектов глохидиев при работе на СЭМ. A, B. НаружнаЯ поверхность раковины глохидиЯ беЗ верхнего слоЯ, раЗруШенного иЗ-За долгой очистки в растворе Щелочи (Anodonta anatina (=Colletopterum), р. Обь, НовосибирскаЯ обл.). C. ТреЩины на раковине глохидиЯ вследствие иЗлиШнего высуШиваниЯ перед напылением (Middendorffinaia mongolica, р. Артёмовка, Приморский кр.). D. ПоврежденнаЯ микроскульптура наружного слоЯ глохидиЯ иЗ-За недостаточного обеЗвоживаниЯ перед напылением (Anodonta anatina, р. Москва). E. «Замыленность» микроскульпуры наружной поверхности глохидиЯ иЗ-За напылениЯ на недостаточно просуШенные раковины (Sinanodonta schrenkii, р. ИлистаЯ, бассейн оЗ. Ханка, Приморский кр.). F. Поврежденный, сморЩенный наружный слой раковины глохидиЯ иЗ-За пересуШиваниЯ перед напылением (Kunashiria japonica, оЗ. Чухуненко, Приморский кр.). МасШтаб 1 мкм (A, B), 5 мкм (C), 10 мкм (D, E, F). Микроскопы Zeiss MERLIN (A–D), Zeiss EVO 40 (E, F), напыление хромом (А–Е), углеродом (F).

РИС. 1. ОбЩий вид фиксированных Этанолом глохидиев в световой (А) и сканируюЩий Электронный (В) микроскопы (Amuranodonta kijaensis, бассейн р. Амур, Хинганский Заповедник, АмурскаЯ обл.). МасШтаб 100 мкм. Микроскопы Nikon (А) и Zeiss EVO 40 (B), напыление Золотом. in Методика подготовки раковин глохидиев (Bivalvia, Unionidae) длЯ работы на сканируюЩем Электронном микроскопе

РИС. 1. ОбЩий вид фиксированных Этанолом глохидиев в световой (А) и сканируюЩий Электронный (В) микроскопы (Amuranodonta kijaensis, бассейн р. Амур, Хинганский Заповедник, АмурскаЯ обл.). МасШтаб 100 мкм. Микроскопы Nikon (А) и Zeiss EVO 40 (B), напыление Золотом.

РИС. 4. НаружнаЯ микроскульптура глохидиев при раЗных условиЯх очистки раковин (Inversiunio yanagawensis, р. Гион, о-в Хонсю, ЯпониЯ) в растворе Щелочи. А. НеповрежденнаЯ микроскульптура. B. ПоврежденнаЯ при передержке в растворе Щелочи. МасШтаб 2 мкм. Микроскопы Zeiss MERLIN (А), Zeiss EVO 40 (В), напыление хромом (А), Золотом (В). in Методика подготовки раковин глохидиев (Bivalvia, Unionidae) длЯ работы на сканируюЩем Электронном микроскопе

РИС. 4. НаружнаЯ микроскульптура глохидиев при раЗных условиЯх очистки раковин (Inversiunio yanagawensis, р. Гион, о-в Хонсю, ЯпониЯ) в растворе Щелочи. А. НеповрежденнаЯ микроскульптура. B. ПоврежденнаЯ при передержке в растворе Щелочи. МасШтаб 2 мкм. Микроскопы Zeiss MERLIN (А), Zeiss EVO 40 (В), напыление хромом (А), Золотом (В).

Fig. 4 in Nodularia vladivostokensis (Bivalvia: Unionidae) from Razdolnaya River (Primorye, Russia)

Fig. 4. Transverse sections of the mollusk's foot: А, Б – fibers of mesentery extending from the foot musles through gonad into the visceral mass; В – musles under the pedal integument, Г, Д – nerve. Scale bars 300 µm (А, В, Г), 100 µm (Д), 40 µm (Б). а – acini, м – mesentery, пг – cavities (sinuses) for hemolymph, эп – perineurium, ф – follicles.

Fig. 3 in Nodularia vladivostokensis (Bivalvia: Unionidae) from Razdolnaya River (Primorye, Russia)

Fig. 3. Transverse sections of the mussel's foot musculature: А – ventral tip of the foot with somatic musculature, Б – an irregular meshwork of muscle fibrous tissue, В – muscle fibers under pedal integument. Scale bar 200 µm (B) and 40 µm (Б). см – somatic muscles, г – granulocytes, смв – irregular mesh of muscle fibers, гм – horizontally oriented muscle fibers, вм – vertically oriented muscle fibers.

Рис. 2. Продольный (А–Д) и поперечный (Е–З) среЗы череЗ наружный покров ноги моллюска с раЗными типами складок: А, Б – Широкие складки в виде плато, В, Г – длинные иЗвилистые складки, Д, Е – складки с округлыми и бокаловидными клетками в субЭпителиальном слое, Ж, З – слабовыраженные складки с больШими полостЯми (синусами) длЯ гемолимфы под субЭпителиальным слоем. МасШтабные линейки 200 мкм (А, В, Ж, З) и 100 мкм (Б, Г–Е). вК – клетки с вакуолЯми, сэ – субЭпителиальный слой, БК – бокаловиднаЯ клетка, сг – синусы длЯ гемолимфы, ф – фолликулы, а – ацинусы. Fig. 2. Saggital (А–Д) and transverse (Е–З) sections of pedal integument with different types of plicae: А, Б – broad plateau-shaped plicae, В, Г – long, tortuous plicae, Д, Е – plicae with round and goblet cells in the subepithelial layer, Ж, З – mild plicae with large cavities (sinuses) for hemolymph under subepithelial layer. Scale bars 200 µm (А, В, Ж, З) and 100 µm (Б, Г–Е). вК – cells with vacuoles, сэ – subepithelial layer, БК – goblet cell, сг – sinuses for hemolymph, ф – follicles, а – acini. in Nodularia vladivostokensis (Bivalvia: Unionidae) from Razdolnaya River (Primorye, Russia)

Рис. 2. Продольный (А–Д) и поперечный (Е–З) среЗы череЗ наружный покров ноги моллюска с раЗными типами складок: А, Б – Широкие складки в виде плато, В, Г – длинные иЗвилистые складки, Д, Е – складки с округлыми и бокаловидными клетками в субЭпителиальном слое, Ж, З – слабовыраженные складки с больШими полостЯми (синусами) длЯ гемолимфы под субЭпителиальным слоем. МасШтабные линейки 200 мкм (А, В, Ж, З) и 100 мкм (Б, Г–Е). вК – клетки с вакуолЯми, сэ – субЭпителиальный слой, БК – бокаловиднаЯ клетка, сг – синусы длЯ гемолимфы, ф – фолликулы, а – ацинусы. Fig. 2. Saggital (А–Д) and transverse (Е–З) sections of pedal integument with different types of plicae: А, Б – broad plateau-shaped plicae, В, Г – long, tortuous plicae, Д, Е – plicae with round and goblet cells in the subepithelial layer, Ж, З – mild plicae with large cavities (sinuses) for hemolymph under subepithelial layer. Scale bars 200 µm (А, В, Ж, З) and 100 µm (Б, Г–Е). вК – cells with vacuoles, сэ – subepithelial layer, БК – goblet cell, сг – sinuses for hemolymph, ф – follicles, а – acini.

Рис. 6. Поперечные (А–Е, З, И) и продольный (Ж) среЗы череЗ органы пиЩеварительной системы моллюска: А – меШок кристаллического стебелька, Б, В – петли киШки, Г, Д – часть желудка с длинными складками на дорсальной части стенки, Е, З – петли киШки с тифлоЗолем, И – боковаЯ часть тифлоЗолЯ. МасШтабные линейки 300 мкм (Е, З, И), 200 мкм (А, В, Г, Д), 40 мкм (Б). мс – меШок кристаллического стебелька, Кс – кристаллический стебелек, Р – реснички, т – тифлоЗоль, lp – lamina propria, г – гемолимфа. Fig. 6. Transverse (А–Е, З, И) and saggital (Ж) sections of the digestive organs: А – crystalline style sac, Б, В – intestinal limbs, Г, Д – part of the stomach with long plicae on the dorsal wall, Е, З – intestinal limbs with typhlosole, И – lateral part of the typhlosole. Scale bars 300 µm (Е, З, И), 200 µm (А, В, Г, Д), 40 µm (B). мс – style sac, Кс – crystalline style, Р – cilia, т – typhlosole, lp – lamina propria, г – hemolymph. in Nodularia vladivostokensis (Bivalvia: Unionidae) from Razdolnaya River (Primorye, Russia)

Рис. 6. Поперечные (А–Е, З, И) и продольный (Ж) среЗы череЗ органы пиЩеварительной системы моллюска: А – меШок кристаллического стебелька, Б, В – петли киШки, Г, Д – часть желудка с длинными складками на дорсальной части стенки, Е, З – петли киШки с тифлоЗолем, И – боковаЯ часть тифлоЗолЯ. МасШтабные линейки 300 мкм (Е, З, И), 200 мкм (А, В, Г, Д), 40 мкм (Б). мс – меШок кристаллического стебелька, Кс – кристаллический стебелек, Р – реснички, т – тифлоЗоль, lp – lamina propria, г – гемолимфа. Fig. 6. Transverse (А–Е, З, И) and saggital (Ж) sections of the digestive organs: А – crystalline style sac, Б, В – intestinal limbs, Г, Д – part of the stomach with long plicae on the dorsal wall, Е, З – intestinal limbs with typhlosole, И – lateral part of the typhlosole. Scale bars 300 µm (Е, З, И), 200 µm (А, В, Г, Д), 40 µm (B). мс – style sac, Кс – crystalline style, Р – cilia, т – typhlosole, lp – lamina propria, г – hemolymph.

Fig. 7 in Nodularia vladivostokensis (Bivalvia: Unionidae) from Razdolnaya River (Primorye, Russia)

Fig. 7. Transverse sections of the hemolymph vessels: А, Б, Г, Д – potential arteries, В, Е – potential veins. Scale bars 300 µm (А), 200 µm (Б, В), 100 µm (Г–Е). К – intestine, ма – musculature of a potential artery, м – mesentery, ж – apidocytes, Р – cilia, а – acini, г – hemolymph.

Fig. 5 in Nodularia vladivostokensis (Bivalvia: Unionidae) from Razdolnaya River (Primorye, Russia)

Fig. 5. Transverse (А, Г) and saggital (Б, В) sections of the digestive diverticulum: А – part of the digestive diverticulum and gonad, Б, В – primary and secondary tubules with ciliated plicae inside, Г – secondary tubules. Scale bars 300 µm (A), 200 µm (В), 100 µm (Б), 40 µm (Г).

Рис. 8. СреЗы череЗ гонады моллюска: А – поперечный среЗ череЗ гонаду самки, Б–Д – фолликулы в гонадах самок (Б, В – Зрелые ооциты круглой формы, готовые к вымету; Г – ооциты в период активного гаметогенеЗа на стадии раннего трофоплаЗматического роста, Д – ооциты каплевидной формы в период преднерестовой стадии при ЗаверШении трофоплаЗматического роста), Е, Ж – поперечные среЗы череЗ гонаду самца, З, И – ацинусы в гонадах самцов (З – преднерестоваЯ стадиЯ, просветы в ацинусах практически отсутствуют, стенки ацинусов не раЗличимы, И – нерестоваЯ стадиЯ, имеютсЯ просветы в ацинусах). МасШтабные линейки 300 мкм (А), 200 мкм (Е), 100 мкм (Ж), 50 мкм (Б–Д, З, И). вя – вакуолиЗированное Ядро, сф – стенка фолликула, вм – вителлиноваЯ мембрана, РО – раЗвиваюЩиесЯ иЗ пелликулы ооциты, пг – ресничный проток гонады, с – сперматоциты, па – просветы в ацинусах. Fig. 8. Sections through the gonads of the mollusk: А – transverse section through the female gonad, Б–Д – ovarian acini, follicles (Б, В – mature round-shaped oocytes ready to be swept out; Г – oocytes in the period of active gametogenesis at the stage of early trophoplasmatic growth, Д – tear-shaped oocytes during the pre-spawning stage at the end of trophoplasmatic growth), Е, Ж – transverse sections through the male gonads, З, И – testicular acini (З – pre-spawning stage, with practically absent gaps in the acini and invisible the acini walls, И – spawning stage, with gaps in the acini). Scale bars 300 µm (A), 200 µm (E), 100 µm (Ж), 50 µm (Б–Д, З, И). вя – vacuolated nucleus, сф – follicle wall, вм – vitelline membrane, РО – developing oocytes arising from a pellicle, пг – ciliated gonadal duct, с – spermatocytes, па – gaps in acini. in Nodularia vladivostokensis (Bivalvia: Unionidae) from Razdolnaya River (Primorye, Russia)

Рис. 8. СреЗы череЗ гонады моллюска: А – поперечный среЗ череЗ гонаду самки, Б–Д – фолликулы в гонадах самок (Б, В – Зрелые ооциты круглой формы, готовые к вымету; Г – ооциты в период активного гаметогенеЗа на стадии раннего трофоплаЗматического роста, Д – ооциты каплевидной формы в период преднерестовой стадии при ЗаверШении трофоплаЗматического роста), Е, Ж – поперечные среЗы череЗ гонаду самца, З, И – ацинусы в гонадах самцов (З – преднерестоваЯ стадиЯ, просветы в ацинусах практически отсутствуют, стенки ацинусов не раЗличимы, И – нерестоваЯ стадиЯ, имеютсЯ просветы в ацинусах). МасШтабные линейки 300 мкм (А), 200 мкм (Е), 100 мкм (Ж), 50 мкм (Б–Д, З, И). вя – вакуолиЗированное Ядро, сф – стенка фолликула, вм – вителлиноваЯ мембрана, РО – раЗвиваюЩиесЯ иЗ пелликулы ооциты, пг – ресничный проток гонады, с – сперматоциты, па – просветы в ацинусах. Fig. 8. Sections through the gonads of the mollusk: А – transverse section through the female gonad, Б–Д – ovarian acini, follicles (Б, В – mature round-shaped oocytes ready to be swept out; Г – oocytes in the period of active gametogenesis at the stage of early trophoplasmatic growth, Д – tear-shaped oocytes during the pre-spawning stage at the end of trophoplasmatic growth), Е, Ж – transverse sections through the male gonads, З, И – testicular acini (З – pre-spawning stage, with practically absent gaps in the acini and invisible the acini walls, И – spawning stage, with gaps in the acini). Scale bars 300 µm (A), 200 µm (E), 100 µm (Ж), 50 µm (Б–Д, З, И). вя – vacuolated nucleus, сф – follicle wall, вм – vitelline membrane, РО – developing oocytes arising from a pellicle, пг – ciliated gonadal duct, с – spermatocytes, па – gaps in acini.

Fig. 7 in Genetic And Morphological Variability And Differentiation Of Freshwater Mussels (Bivavia, Unionidae, Anodontinae) In Ukraine

Fig. 7. Micrographs of the outer edge of the inhalant siphon in mussels: 1 — A. cygnea (r. Derevychka); 2 — A. anatina (Lyutsymer lake); 3 — P. complanata (r. Uzh); 4 — S. woodiana (r. Danube). Рис. 7. Микрофотографии наружного края вводных сифонов у беззубок: 1 — A. cygnea (р. Деревичка); 2 — A. anatina (оз. Люцимер); 3 — P. complanata (р. Уж); 4 — S. woodiana (р. Дунай.

Fig. 5 in Genetic And Morphological Variability And Differentiation Of Freshwater Mussels (Bivavia, Unionidae, Anodontinae) In Ukraine

Fig. 5. The distribution of mussels from four species in the space of canonical variables made by conchological characters. N o t e. Еxtrapolation of specimens distribution on probability level is p <0.05. Рис. 5. Распределение особей четырёх видов беззубок в пространстве канонических переменных, построенных по конхиологическим признакам. П р и м е ч а н и е. Экстраполяция распределения особей проведена на уровне вероятности p <0,05.

Fig. 2 in Genetic And Morphological Variability And Differentiation Of Freshwater Mussels (Bivavia, Unionidae, Anodontinae) In Ukraine

Fig. 2. UPGMA phenogram of genetic distances (Nei, 1972) between mussel species and populations. N o t e. Aa — A. anatina, Ac — A. cygnea, Pc — P. complanata, Sw — S. woodiana. Riwer systems: 1 — Danube, 2 — r. Tysa, 3 — Upper Dniester, 4 — Lower Dniester, 5 — r. Ingul, 6 — r. Western Bug, 7 — r. Prypyat, 8 — Upper Dnipro, 9 — r. Ros, 10 — r. Psel, 11 — r. Siversky Donets, 12 — r. Salgyr.

Fig. 1 in Genetic And Morphological Variability And Differentiation Of Freshwater Mussels (Bivavia, Unionidae, Anodontinae) In Ukraine

Fig. 1. Main places of material collection: 1 — r. Danube, 2 — r. Tysa, 3 — Upper Dniester, 4 — Lower Dniester, 5 — r. Ingul, 6 — r. Western Bug, 7 — r. Prypyat, 8 — Upper Dnipro, 9 — r. Ros, 10 — r. Psel, 11 — r. Siversky Donets, 12 — r. Salgyr.

Fig. 4 in Genetic And Morphological Variability And Differentiation Of Freshwater Mussels (Bivavia, Unionidae, Anodontinae) In Ukraine

Fig. 4. UPGMA phenogram of genetic distances (Tamura et al., 2004, 2011) between specimens of four Anodontinae species made by homologous sequences of two homologous loci (COI and 16S). Рис. 4. UPGMA фенограмма генетических дистанций (Tamura et al., 2004, 2011), построенная по гомологичным последовательностям двух локусов (COI и 16S) между отдельными особями четырёх видов Anоdontinae.

Fig. 3 in Genetic And Morphological Variability And Differentiation Of Freshwater Mussels (Bivavia, Unionidae, Anodontinae) In Ukraine

Fig. 3. Geographic variation of Mdh-1 locus in P. complanata populations in Ukraine (Mdh-1110 — filled with black, Mdh-1120 — filled with grey).

Fig. 6 in Genetic And Morphological Variability And Differentiation Of Freshwater Mussels (Bivavia, Unionidae, Anodontinae) In Ukraine

Fig. 6. The umbonal structure of the shell in molluscs from subfamily Anodontinae: 1 — A. cygnea; 2 — A. anatina; 3 — P. complanata; 4 — S. woodiana. Рис. 6. Структура вершины раковины моллюсков подсемейства Anodontinae: 1 — A. cygnea; 2 — A. anatina; 3 — P. complanata; 4 — S. woodiana.

Рис. 3. Географическая изменчивость локуса Mdh-1 в популяциях P. complanata в пределах Украины (Mdh-1110 — заполнение чёрным цветом, Mdh-1120 — серым). in Genetic And Morphological Variability And Differentiation Of Freshwater Mussels (Bivavia, Unionidae, Anodontinae) In Ukraine

Рис. 3. Географическая изменчивость локуса Mdh-1 в популяциях P. complanata в пределах Украины (Mdh-1110 — заполнение чёрным цветом, Mdh-1120 — серым).