Find research datasets worth reusing
Search datasets from major research repositories and use ShareScore to quickly assess how well each record supports discovery, access, and reuse.
280
datasets available to search
ShareScore release 0.7.1
Dataset results
280 results for “Unionida”
Рис. 2. UPGMA — фенограма генетических дистанций (Nei, 1972) между видами и популяциями двустворчатых моллюсков. П р и м е ч а н и е. Aa — A. anatina, Ac — A. cygnea, Pc — P. complanata, Sw — S. woodiana. Речные системы: 1 — Дунай, 2 — р. Тиса, 3 — Верхний Днестр, 4 — Нижний Днестр, 5 — р. Ингул, 6 — р. Западный Буг, 7 — р. Припять, 8 — р. Верхний Днепр, 9 — р. Рось, 10 — р. Псёл, 11 — р. Северский Донец, 12 — р. Салгир. in Genetic And Morphological Variability And Differentiation Of Freshwater Mussels (Bivavia, Unionidae, Anodontinae) In Ukraine
Рис. 2. UPGMA — фенограма генетических дистанций (Nei, 1972) между видами и популяциями двустворчатых моллюсков. П р и м е ч а н и е. Aa — A. anatina, Ac — A. cygnea, Pc — P. complanata, Sw — S. woodiana. Речные системы: 1 — Дунай, 2 — р. Тиса, 3 — Верхний Днестр, 4 — Нижний Днестр, 5 — р. Ингул, 6 — р. Западный Буг, 7 — р. Припять, 8 — р. Верхний Днепр, 9 — р. Рось, 10 — р. Псёл, 11 — р. Северский Донец, 12 — р. Салгир.
Fig. 1 in Freshwater Mussels (Mollusca, Bivalvia, Unionidae) Of The Danube River Basin Of Ukraine
Fig. 1. Shells (left side): 1 — U. tumidus (the Stalineshty River, Mamalyga); 2 — U. pictorum (the Stalineshty River, Mamalyga); 3 — U. crassus (the Borzhava River, Vilkhivka); 4 — A. anatina (PMK channel, Vylkove); 5 — A. cygnea (PMK canal, Vylkove); 6 — P. complanata (the Danube River, Lisky); 7 — S. woodiana (the Danube River, Vylkove); 8 — S. woodiana (the Latorytsa River, Solomonove). Scale 10 mm.
Рис. 7. Поперечные среЗы череЗ сосуды в раЗных частЯх ноги моллюска: А, Б, Г, Д – предположительно артерии, В, Е – предположительно веноЗные сосуды. МасШтабные линейки 300 мкм (А), 200 мкм (Б, В), 100 мкм (Г–Е). К – киШка, ма – мускулатура у артерий, м – меЗентерий, ж – жировые клетки, Р – реснички, а – ацинусы, г – гемолимфа. in Nodularia vladivostokensis (Bivalvia: Unionidae) from Razdolnaya River (Primorye, Russia)
Рис. 7. Поперечные среЗы череЗ сосуды в раЗных частЯх ноги моллюска: А, Б, Г, Д – предположительно артерии, В, Е – предположительно веноЗные сосуды. МасШтабные линейки 300 мкм (А), 200 мкм (Б, В), 100 мкм (Г–Е). К – киШка, ма – мускулатура у артерий, м – меЗентерий, ж – жировые клетки, Р – реснички, а – ацинусы, г – гемолимфа.
Рис. 5. Поперечные (А, Г) и продольные (Б, В) среЗы череЗ пиЩеварительную желеЗу моллюска: А – часть пиЩеварительной желеЗы и половой гонады, Б, В – канальцы первого и второго порЯдков, имеюЩие внутри покрытые ресничками складки, Г – канальцы второго порЯдка. МасШтабные линейки 300 мкм (А), 200 мкм (В), 100 мкм (Б), 40 мкм (Г). in Nodularia vladivostokensis (Bivalvia: Unionidae) from Razdolnaya River (Primorye, Russia)
Рис. 5. Поперечные (А, Г) и продольные (Б, В) среЗы череЗ пиЩеварительную желеЗу моллюска: А – часть пиЩеварительной желеЗы и половой гонады, Б, В – канальцы первого и второго порЯдков, имеюЩие внутри покрытые ресничками складки, Г – канальцы второго порЯдка. МасШтабные линейки 300 мкм (А), 200 мкм (В), 100 мкм (Б), 40 мкм (Г).
Рис. 4. Поперечные среЗы череЗ ногу моллюска: А, Б – волокна меЗентериЯ, отходЯЩие от мускулатуры ноги сквоЗь половую желеЗу вглубь висцеральной массы, В – мускулатура под наружным покровом ноги, Г, Д – край ноги с нервом. МасШтабные линейки 300 мкм (А, В, Г), 100 мкм (Д), 40 мкм (Б). а – ацинусы, м – меЗентерий, пг – полости (синусы) длЯ гемолимфы, эп – периневрий, ф – фолликулы. in Nodularia vladivostokensis (Bivalvia: Unionidae) from Razdolnaya River (Primorye, Russia)
Рис. 4. Поперечные среЗы череЗ ногу моллюска: А, Б – волокна меЗентериЯ, отходЯЩие от мускулатуры ноги сквоЗь половую желеЗу вглубь висцеральной массы, В – мускулатура под наружным покровом ноги, Г, Д – край ноги с нервом. МасШтабные линейки 300 мкм (А, В, Г), 100 мкм (Д), 40 мкм (Б). а – ацинусы, м – меЗентерий, пг – полости (синусы) длЯ гемолимфы, эп – периневрий, ф – фолликулы.
Рис. 3. Поперечные среЗы череЗ мускулатуру ноги моллюска: А – вентральный край ноги с соматической мускулатурой, Б – нерегулЯрнаЯ сетка мыШечных волокон, В – пучки волокон под наружным покровом. МасШтабные линейки 200 мкм (В) и 40 мкм (Б). см – соматическаЯ мускулатура, г – гранулоциты, смв – нерегулЯрнаЯ сетка мыШечных волокон, гм – гориЗонтально ориентированные мыШечные волокна, вм – вертикально ориентированные мыШечные волокна. in Nodularia vladivostokensis (Bivalvia: Unionidae) from Razdolnaya River (Primorye, Russia)
Рис. 3. Поперечные среЗы череЗ мускулатуру ноги моллюска: А – вентральный край ноги с соматической мускулатурой, Б – нерегулЯрнаЯ сетка мыШечных волокон, В – пучки волокон под наружным покровом. МасШтабные линейки 200 мкм (В) и 40 мкм (Б). см – соматическаЯ мускулатура, г – гранулоциты, смв – нерегулЯрнаЯ сетка мыШечных волокон, гм – гориЗонтально ориентированные мыШечные волокна, вм – вертикально ориентированные мыШечные волокна.
Рис. 2. ВнеШний вид глохидиев (створки открыты, вид иЗнутри): А – Beringiana chereshnevi (оЗ. Элергытгын, Чукотка); B – Berianiana compressa; C – Kunashiria japonica; D – Kunashiria haconensis. МасШтаб 40 мкм. Fig. 2. Glohidia with open valves (inside view): А – Beringiana chereshnevi (Elergytgyn Lake, Chukotka); B – Berianiana compressa; C – Kunashiria japonica; D – Kunashiria haconensis. Scale bar 40 µm. in Beringiana and Kunashiria (Bivalvia: Unionidae: Anodontinae)
Рис. 2. ВнеШний вид глохидиев (створки открыты, вид иЗнутри): А – Beringiana chereshnevi (оЗ. Элергытгын, Чукотка); B – Berianiana compressa; C – Kunashiria japonica; D – Kunashiria haconensis. МасШтаб 40 мкм. Fig. 2. Glohidia with open valves (inside view): А – Beringiana chereshnevi (Elergytgyn Lake, Chukotka); B – Berianiana compressa; C – Kunashiria japonica; D – Kunashiria haconensis. Scale bar 40 µm.
Рис. 2. Крючки глохидиев Colletopterum anatinum: А – оЗ. Красное; B – оЗ. Арахлей. МасШтабные линейки 20 мкм. Fig. 2. Hooks of glochidia of Colletopterum anatinum: А – Lake Krasnoye; B – Lake Arakhley. Scale bars – 20 µm. in Morphology of glochidia of the anodontine bivalves of the genus Colletopterum (Unionidae) inhabiting water basins of Khakasia Republic and Chitinskaya Territory
Рис. 2. Крючки глохидиев Colletopterum anatinum: А – оЗ. Красное; B – оЗ. Арахлей. МасШтабные линейки 20 мкм. Fig. 2. Hooks of glochidia of Colletopterum anatinum: А – Lake Krasnoye; B – Lake Arakhley. Scale bars – 20 µm.
Рис. 1. Створки глохидиев Colletopterum piscinale: А – вид снаружи, оЗ. ШакШинское; B – вид иЗнутри, оЗ. Новомихайловское. МасШтабные линейки 50 мкм. Fig. 1. Valves of glochidia of Colletopterum piscinale: A – exterior view, Lake Shakshinskoye; B – interior view, Lake Novomikhailovskoye. Scale bars –50 µm. in Morphology of glochidia of the anodontine bivalves of the genus Colletopterum (Unionidae) inhabiting water basins of Khakasia Republic and Chitinskaya Territory
Рис. 1. Створки глохидиев Colletopterum piscinale: А – вид снаружи, оЗ. ШакШинское; B – вид иЗнутри, оЗ. Новомихайловское. МасШтабные линейки 50 мкм. Fig. 1. Valves of glochidia of Colletopterum piscinale: A – exterior view, Lake Shakshinskoye; B – interior view, Lake Novomikhailovskoye. Scale bars –50 µm.
Рис. 1. Раковины беЗЗубок: А – Beringiana chereshnevi (оЗ. АЗабачье, Камчатка); В – Kunashiria japonica (оЗ. Утиное, о-в Зеленый); С – Kunashiria haconensis (оЗ. Лагунное, о-в КунаШир). МасШтаб 5 см. Fig. 1. Shells of anodontins: А – Beringiana chereshnevi, Azabachie Lake, Kamchatka; В – Kunashiria japonica, Utinoye Lake, Zelionyi Is.; С – Kunashiria haconensis, Lagunnoye Lake, Kunashir Is. Scale bar 5 cm. in Beringiana and Kunashiria (Bivalvia: Unionidae: Anodontinae)
Рис. 1. Раковины беЗЗубок: А – Beringiana chereshnevi (оЗ. АЗабачье, Камчатка); В – Kunashiria japonica (оЗ. Утиное, о-в Зеленый); С – Kunashiria haconensis (оЗ. Лагунное, о-в КунаШир). МасШтаб 5 см. Fig. 1. Shells of anodontins: А – Beringiana chereshnevi, Azabachie Lake, Kamchatka; В – Kunashiria japonica, Utinoye Lake, Zelionyi Is.; С – Kunashiria haconensis, Lagunnoye Lake, Kunashir Is. Scale bar 5 cm.
Рис. 4. Особенности строениЯ глохидиев Kunashiria japonica (А, B) и K. haconensis (C, D): микроскульптура наружной поверхности створки глохидиЯ в районе аддуктора (А) и у лигамента (C); внутреннЯЯ поверхность глохидиЯ (B, D). МасШтаб 2 мкм (А, C); 4 мкм (B, D). Fig. 4. Structural peculiarities of glochidia of Kunashiria japonica (А, B) and K. haconensis (C, D): microsculpture of the outer surface of glohidium near adductor (А) and ligament (C); inner surface of glochidium (B, D). Scale bar 2 µm (А, C); 4 µm (B, D). in Beringiana and Kunashiria (Bivalvia: Unionidae: Anodontinae)
Рис. 4. Особенности строениЯ глохидиев Kunashiria japonica (А, B) и K. haconensis (C, D): микроскульптура наружной поверхности створки глохидиЯ в районе аддуктора (А) и у лигамента (C); внутреннЯЯ поверхность глохидиЯ (B, D). МасШтаб 2 мкм (А, C); 4 мкм (B, D). Fig. 4. Structural peculiarities of glochidia of Kunashiria japonica (А, B) and K. haconensis (C, D): microsculpture of the outer surface of glohidium near adductor (А) and ligament (C); inner surface of glochidium (B, D). Scale bar 2 µm (А, C); 4 µm (B, D).
Рис. 3. Особенности строениЯ глохидиев Beringiana: А – микроскульптура наружной поверхности створки глохидиЯ B. compressa; B – микроскульптура наружной поверхности створки глохидиЯ B. chereshnevi (оЗ. АЗабачье, Камчатка); C – внутреннЯЯ поверхность глохидиЯ B. chereshnevi (оЗ. Элергытгын, Чукотка). МасШтаб 2 мкм (А, B); 4 мкм (C). Fig. 3. Structural peculiarities of glochidia of Beringiana: А – micro-sculpture of the outer surface of glohidium of B. compressa; B – micro-sculpture of the outer surface of glohidium of B. chereshnevi (Azabachie Lake, Kamchatka); C – inner surface of glochidium of B. chereshnevi (Elergytgyn Lake, Chukotka). Scale bar 2 µm (А, B); 4 µm (C). in Beringiana and Kunashiria (Bivalvia: Unionidae: Anodontinae)
Рис. 3. Особенности строениЯ глохидиев Beringiana: А – микроскульптура наружной поверхности створки глохидиЯ B. compressa; B – микроскульптура наружной поверхности створки глохидиЯ B. chereshnevi (оЗ. АЗабачье, Камчатка); C – внутреннЯЯ поверхность глохидиЯ B. chereshnevi (оЗ. Элергытгын, Чукотка). МасШтаб 2 мкм (А, B); 4 мкм (C). Fig. 3. Structural peculiarities of glochidia of Beringiana: А – micro-sculpture of the outer surface of glohidium of B. compressa; B – micro-sculpture of the outer surface of glohidium of B. chereshnevi (Azabachie Lake, Kamchatka); C – inner surface of glochidium of B. chereshnevi (Elergytgyn Lake, Chukotka). Scale bar 2 µm (А, B); 4 µm (C).
Рис. 3. Микроскульптура наружной (А, B) и внутренней (C, D) поверхностей глохидиальных створок Colletopterum piscinale, оЗ. ШакШинское. МасШтабные линейки 2 мкм. Fig. 3. Microsculpture of the outer (А, B) and inner (C, D) surfaces of glochidial valves of Colletopterum piscinale, Lake Shakshinskoye. Scale bars – 2 µm. in Morphology of glochidia of the anodontine bivalves of the genus Colletopterum (Unionidae) inhabiting water basins of Khakasia Republic and Chitinskaya Territory
Рис. 3. Микроскульптура наружной (А, B) и внутренней (C, D) поверхностей глохидиальных створок Colletopterum piscinale, оЗ. ШакШинское. МасШтабные линейки 2 мкм. Fig. 3. Microsculpture of the outer (А, B) and inner (C, D) surfaces of glochidial valves of Colletopterum piscinale, Lake Shakshinskoye. Scale bars – 2 µm.
РИС. 2. Сравнение наружной микроскульпуры глохидиев при длительной фиксации 75% Этанолом (А) и 10% формалином (В). А. Sinanodonta schrenkii (р. РаЗдольнаЯ, Приморский кр., сбор VI.1999). B. Sinanodonta calipygos (окрестности Киото, о-в Хонсю, ЯпониЯ, сбор V.1982). МасШтаб 2 мкм. Микроскоп Zeiss EVO 40, напыление хромом. in Методика подготовки раковин глохидиев (Bivalvia, Unionidae) длЯ работы на сканируюЩем Электронном микроскопе
РИС. 2. Сравнение наружной микроскульпуры глохидиев при длительной фиксации 75% Этанолом (А) и 10% формалином (В). А. Sinanodonta schrenkii (р. РаЗдольнаЯ, Приморский кр., сбор VI.1999). B. Sinanodonta calipygos (окрестности Киото, о-в Хонсю, ЯпониЯ, сбор V.1982). МасШтаб 2 мкм. Микроскоп Zeiss EVO 40, напыление хромом.
РИС. 1. ОбЩий вид фиксированных Этанолом глохидиев в световой (А) и сканируюЩий Электронный (В) микроскопы (Amuranodonta kijaensis, бассейн р. Амур, Хинганский Заповедник, АмурскаЯ обл.). МасШтаб 100 мкм. Микроскопы Nikon (А) и Zeiss EVO 40 (B), напыление Золотом FIG. 1. Ethanol-fixed glochidia (Amuranodonta kijaensis, Amur River basin, Khingansky Nature Reserve, Amur Oblast), light (A) and scanning electron (B) microscopes. Scale bar 100 mµ. Light Nikon (A) and scanning electron Zeiss EVO 40 (B) microscopes, sputter coating with gold. in Методика подготовки раковин глохидиев (Bivalvia, Unionidae) длЯ работы на сканируюЩем Электронном микроскопе
РИС. 1. ОбЩий вид фиксированных Этанолом глохидиев в световой (А) и сканируюЩий Электронный (В) микроскопы (Amuranodonta kijaensis, бассейн р. Амур, Хинганский Заповедник, АмурскаЯ обл.). МасШтаб 100 мкм. Микроскопы Nikon (А) и Zeiss EVO 40 (B), напыление Золотом FIG. 1. Ethanol-fixed glochidia (Amuranodonta kijaensis, Amur River basin, Khingansky Nature Reserve, Amur Oblast), light (A) and scanning electron (B) microscopes. Scale bar 100 mµ. Light Nikon (A) and scanning electron Zeiss EVO 40 (B) microscopes, sputter coating with gold.
РИС. 11. ИЗображениЯ крючков глохидиев при раЗной настройке Яркости и контрастности (Anemina arcaeformis, р. Сита, Хабаровский кр.). А. Оптимальные Яркость и контрастность. В. ИЗбыточнаЯ контрастность. С. ИЗбыточнаЯ Яркость. МасШтаб 20 мкм. Микроскоп Zeiss EVO 40, напыление углеродом. FIG. 11. Imagines of glochidia hooks with different brightness and contrast value (Anemina arcaeformis, Sita River, Khabarovsk Krai). A. Optimal brightness and contrast. B. Excessive contrast. C. Excessive brightness. Scale bars 20 μm. Zeiss EVO 40 microscope, sputter coating with carbon. in Методика подготовки раковин глохидиев (Bivalvia, Unionidae) длЯ работы на сканируюЩем Электронном микроскопе
РИС. 11. ИЗображениЯ крючков глохидиев при раЗной настройке Яркости и контрастности (Anemina arcaeformis, р. Сита, Хабаровский кр.). А. Оптимальные Яркость и контрастность. В. ИЗбыточнаЯ контрастность. С. ИЗбыточнаЯ Яркость. МасШтаб 20 мкм. Микроскоп Zeiss EVO 40, напыление углеродом. FIG. 11. Imagines of glochidia hooks with different brightness and contrast value (Anemina arcaeformis, Sita River, Khabarovsk Krai). A. Optimal brightness and contrast. B. Excessive contrast. C. Excessive brightness. Scale bars 20 μm. Zeiss EVO 40 microscope, sputter coating with carbon.
РИС. 7. НедостаточнаЯ промывка раковин глохидиев после очиЩениЯ в Щелочи (5% КОН). А, С. «Замыленность» пор наружной поверхности створок (Cristaria tuberculata, оЗ. Ханка, Приморский кр.). B. Остаток Щелочи, выпавШий кристаллами на поверхности личинки (Unio dembeae, р. Дуко, ЭфиопиЯ). D. Капли раствора Щелочи (укаЗаны стрелками) на поверхности Шипов крючка (Nodularia douglasiae, р. Гион, о-в Хонсю, ЯпониЯ). МасШтаб 5 мкм (А, С), 2 мкм (B, D). Микроскоп Zeiss MERLIN, напыление углеродом (А, В), хромом (С, D). FIG. 7. Insufficient rinsing of glochidia after cleaning in alkali (5% KOH). A, C. «Blurredness» of the exterior valve pores (Cristaria tuberculata, Khanka Lake, Primorsky Krai). B. Precipitation of alkali crystals on the exterior glochidia surface (Unio dembeae, Duko River, Ethiopia). D. Drops of alkali (indicated by arrows) on the hook spines (Nodularia douglasiae, Gion River, Honshu Island, Japan). Scale bars 5 μm (A, C), 2 μm (B, D). Zeiss MERLIN microscope, sputter coating with carbon (A, B) and chromium (C, D). in Методика подготовки раковин глохидиев (Bivalvia, Unionidae) длЯ работы на сканируюЩем Электронном микроскопе
РИС. 7. НедостаточнаЯ промывка раковин глохидиев после очиЩениЯ в Щелочи (5% КОН). А, С. «Замыленность» пор наружной поверхности створок (Cristaria tuberculata, оЗ. Ханка, Приморский кр.). B. Остаток Щелочи, выпавШий кристаллами на поверхности личинки (Unio dembeae, р. Дуко, ЭфиопиЯ). D. Капли раствора Щелочи (укаЗаны стрелками) на поверхности Шипов крючка (Nodularia douglasiae, р. Гион, о-в Хонсю, ЯпониЯ). МасШтаб 5 мкм (А, С), 2 мкм (B, D). Микроскоп Zeiss MERLIN, напыление углеродом (А, В), хромом (С, D). FIG. 7. Insufficient rinsing of glochidia after cleaning in alkali (5% KOH). A, C. «Blurredness» of the exterior valve pores (Cristaria tuberculata, Khanka Lake, Primorsky Krai). B. Precipitation of alkali crystals on the exterior glochidia surface (Unio dembeae, Duko River, Ethiopia). D. Drops of alkali (indicated by arrows) on the hook spines (Nodularia douglasiae, Gion River, Honshu Island, Japan). Scale bars 5 μm (A, C), 2 μm (B, D). Zeiss MERLIN microscope, sputter coating with carbon (A, B) and chromium (C, D).
РИС. 9. ВнеШний вид раковин глохидиев (Sinanodonta woodiana, р. Одра, ПольШа), очиЩенных с помоЩью Щелочи (5% KOH). A. Темные пЯтна на поверхности, свидетельствуюЩие о недостаточной промывке после Щелочи. B. ХороШо очиЩеннаЯ и правильно промытаЯ раковина. МасШтаб 50 мкм. Микроскоп Zeiss EVO 40, напыление Золотом. FIG. 9. Glochidia shells (Sinanodonta woodiana, Odra River, Poland) cleaned in alkali (5% KOH). A. Dark spots on the shell surface, indicating insufficient rinsing after alkali. B. Properly cleaned and rinsed shell. Scale bars 50 μm. Zeiss EVO 40 microscope, sputter coating with gold. in Методика подготовки раковин глохидиев (Bivalvia, Unionidae) длЯ работы на сканируюЩем Электронном микроскопе
РИС. 9. ВнеШний вид раковин глохидиев (Sinanodonta woodiana, р. Одра, ПольШа), очиЩенных с помоЩью Щелочи (5% KOH). A. Темные пЯтна на поверхности, свидетельствуюЩие о недостаточной промывке после Щелочи. B. ХороШо очиЩеннаЯ и правильно промытаЯ раковина. МасШтаб 50 мкм. Микроскоп Zeiss EVO 40, напыление Золотом. FIG. 9. Glochidia shells (Sinanodonta woodiana, Odra River, Poland) cleaned in alkali (5% KOH). A. Dark spots on the shell surface, indicating insufficient rinsing after alkali. B. Properly cleaned and rinsed shell. Scale bars 50 μm. Zeiss EVO 40 microscope, sputter coating with gold.
РИС. 10. НаружнаЯ микроскульптура раковин глохидиев при напылении раЗными материалами. А. Углеродом (Kunashiria haconensis, оЗ. Песчаное, о-в КунаШир, Курильские о-ва). В. Хромом (Kunashiria haconensis, оЗ. Песчаное, о-в КунаШир, Курильские о-ва). C. Хромом (Anodonta cygnea, оЗ. Хамржицкое, ПольШа). D. Золотом (Anodonta cygnea, оЗ. Хамржицкое, ПольШа). МасШтабнаЯ линейка 2 мкм. Микроскопы Zeiss EVO 40 (А, С), Zeiss MERLIN (В, D). FIG. 10. External glochidia microsculpture with different material coating. A. Carbon coated (Kunashiria haconensis, Peschanoe Lake, Kunashir Island, Kuril Islands). B. Chromium coated (Kunashiria haconensis, Peschanoe Lake, Kunashir Island, Kuril Islands). C. Chromium coated (Anodonta cygnea, Khamrzhitskoe Lake, Poland). D. Gold coated (Anodonta cygnea, Khamrzhitskoe Lake, Poland). Scale bars 2 μm. Zeiss EVO 40 (A, C) and Zeiss MERLIN (B, D) microscopes. in Методика подготовки раковин глохидиев (Bivalvia, Unionidae) длЯ работы на сканируюЩем Электронном микроскопе
РИС. 10. НаружнаЯ микроскульптура раковин глохидиев при напылении раЗными материалами. А. Углеродом (Kunashiria haconensis, оЗ. Песчаное, о-в КунаШир, Курильские о-ва). В. Хромом (Kunashiria haconensis, оЗ. Песчаное, о-в КунаШир, Курильские о-ва). C. Хромом (Anodonta cygnea, оЗ. Хамржицкое, ПольШа). D. Золотом (Anodonta cygnea, оЗ. Хамржицкое, ПольШа). МасШтабнаЯ линейка 2 мкм. Микроскопы Zeiss EVO 40 (А, С), Zeiss MERLIN (В, D). FIG. 10. External glochidia microsculpture with different material coating. A. Carbon coated (Kunashiria haconensis, Peschanoe Lake, Kunashir Island, Kuril Islands). B. Chromium coated (Kunashiria haconensis, Peschanoe Lake, Kunashir Island, Kuril Islands). C. Chromium coated (Anodonta cygnea, Khamrzhitskoe Lake, Poland). D. Gold coated (Anodonta cygnea, Khamrzhitskoe Lake, Poland). Scale bars 2 μm. Zeiss EVO 40 (A, C) and Zeiss MERLIN (B, D) microscopes.
РИС. 4. НаружнаЯ микроскульптура глохидиев при раЗных условиЯх очистки раковин (Inversiunio yanagawensis, р. Гион, о-в Хонсю, ЯпониЯ) в растворе Щелочи. А. НеповрежденнаЯ микроскульптура. B. ПоврежденнаЯ при передержке в растворе Щелочи. МасШтаб 2 мкм. Микроскопы Zeiss MERLIN (А), Zeiss EVO 40 (В), напыление хромом (А), Золотом (В). FIG. 4. Exterior valve microsculpture under different conditions of cleaning in alkali (Inversiunio yanagawensis, Gion River, Honshu Island, Japan). A. Undamaged microsculpture. B. Damaged microsculpture by excessive treatment in alkali. Scale bars 2 μm. Zeiss MERLIN (A) and Zeiss EVO 40 (B) microscopes, sputter coating with chromium (A) and gold (B). in Методика подготовки раковин глохидиев (Bivalvia, Unionidae) длЯ работы на сканируюЩем Электронном микроскопе
РИС. 4. НаружнаЯ микроскульптура глохидиев при раЗных условиЯх очистки раковин (Inversiunio yanagawensis, р. Гион, о-в Хонсю, ЯпониЯ) в растворе Щелочи. А. НеповрежденнаЯ микроскульптура. B. ПоврежденнаЯ при передержке в растворе Щелочи. МасШтаб 2 мкм. Микроскопы Zeiss MERLIN (А), Zeiss EVO 40 (В), напыление хромом (А), Золотом (В). FIG. 4. Exterior valve microsculpture under different conditions of cleaning in alkali (Inversiunio yanagawensis, Gion River, Honshu Island, Japan). A. Undamaged microsculpture. B. Damaged microsculpture by excessive treatment in alkali. Scale bars 2 μm. Zeiss MERLIN (A) and Zeiss EVO 40 (B) microscopes, sputter coating with chromium (A) and gold (B).
ScienceDex guides
Understand access before you commit
These curated guides explain access requirements, typical timelines, costs, and reuse considerations for widely used research datasets.
Allen Brain Atlas
Allen Brain Atlas is an Allen Institute collection of brain map atlases, datasets, APIs, and analysis tools covering mouse, human, and non-human primate brain resources.
Annotated Behaviour and Observability Dataset (ABODe)
ABODe is a University of Edinburgh DataShare dataset for behavior classification in group-housed mice using home-cage video, identities, bounding boxes, ground-plate positions, and annotator labels.
DANDI Archive for NWB datasets
DANDI is a BRAIN Initiative archive for publishing and sharing neurophysiology data, including electrophysiology, optophysiology, and behavioral data packaged as NWB and related standards.
International Brain Laboratory public data
The International Brain Laboratory public data releases expose standardized mouse decision-making experiments, including Neuropixels recordings, widefield calcium imaging, behavior, and session metadata accessed through the ONE API.
OpenNeuro
OpenNeuro is a free, open platform for sharing neuroimaging datasets, with public search, dataset pages, and download paths for web, S3, DataLad, and the OpenNeuro CLI.