Find research datasets worth reusing
Search datasets from major research repositories and use ShareScore to quickly assess how well each record supports discovery, access, and reuse.
639
datasets available to search
ShareScore release 0.9.0
Dataset results
639 results for “4 to 8”
Рис. 4. Карта-схема мест встреч пятнистого оΛеня в Нижнем Приамурье в 1979–2021 гг. КваΑраты — места фоторегистрации: 1 — верховья рр. Обор и Àурмин; 2, 3 — Анюйский национаΛьный парк; круги — места встреч по Λитературным и опросным Αанным: 1 — окрестности с. Кутузовка (место первой регистрации в 1979 г.); 2 — верховья р. СиΑима; 3 — устье р. Нижняя Буге; 4 — бассейн р. Мухен; 5–8 — Анюйский национаΛьный парк (соответственно, р. Пихца, урочище Сира, окрестности с. Арсеньево, устье р. СоΛоми); 9 — среΑнее течение р. СоΛоми; 10 — 76 км трассы ΔиΑога — Ванино; 11 — бассейн р. Кия; 12 — бассейн р. ХойΑур; 13 — бассейн р. Нюра Fig. 4. A schematic map of sika deer sightings in the Lower Amur Region in 1979-2021. Squares designate sites of photo recording: 1 — upper reaches of the rivers Obor and Durmin; 2, 3 — Anyui National Park; circles designate sightings sites according to the literature and the survey data: 1 — vicinity of the village Kutuzovka (the place of the first registration in 1979); 2 — upper reaches of the river Sidima; 3 — the mouth of the river Lower Buge; 4 — the Mukhen River basin; 5-8 —Anyui National Park (respectively, the Pikhtsa River, the Sira tract, the vicinity of the village Arsenyevo, the mouth of the Solomi River); 9 — the middle course of the Solomi River; 10 — 76 km of the Lidoga-Vanino Highway; 11 — the Kiya River basin; 12 — the Khoydur River basin; 13 — the Nyura River basin in New data on the distribution of sika deer Cervus nippon Temminck, 1838 in the Lower Amur Region
Рис. 4. Карта-схема мест встреч пятнистого оΛеня в Нижнем Приамурье в 1979–2021 гг. КваΑраты — места фоторегистрации: 1 — верховья рр. Обор и Àурмин; 2, 3 — Анюйский национаΛьный парк; круги — места встреч по Λитературным и опросным Αанным: 1 — окрестности с. Кутузовка (место первой регистрации в 1979 г.); 2 — верховья р. СиΑима; 3 — устье р. Нижняя Буге; 4 — бассейн р. Мухен; 5–8 — Анюйский национаΛьный парк (соответственно, р. Пихца, урочище Сира, окрестности с. Арсеньево, устье р. СоΛоми); 9 — среΑнее течение р. СоΛоми; 10 — 76 км трассы ΔиΑога — Ванино; 11 — бассейн р. Кия; 12 — бассейн р. ХойΑур; 13 — бассейн р. Нюра Fig. 4. A schematic map of sika deer sightings in the Lower Amur Region in 1979-2021. Squares designate sites of photo recording: 1 — upper reaches of the rivers Obor and Durmin; 2, 3 — Anyui National Park; circles designate sightings sites according to the literature and the survey data: 1 — vicinity of the village Kutuzovka (the place of the first registration in 1979); 2 — upper reaches of the river Sidima; 3 — the mouth of the river Lower Buge; 4 — the Mukhen River basin; 5-8 —Anyui National Park (respectively, the Pikhtsa River, the Sira tract, the vicinity of the village Arsenyevo, the mouth of the Solomi River); 9 — the middle course of the Solomi River; 10 — 76 km of the Lidoga-Vanino Highway; 11 — the Kiya River basin; 12 — the Khoydur River basin; 13 — the Nyura River basin
Рис. 6–15. Anomala macrorhynchos sp. nov., гоΛотип (6–9), A. millestriga, синтип (?), «Sze-chuen» (ZMB) (10–12) и A. punctissima, паратип, «Laos, Vientiane prov., Ban Van Eue» (cF) (13–15): 6 — общий виΔ; 7, 10, 13 — эΔеагус, виΔ сбоку; 8, 11, 14 — парамеры, виΔ сверху; 9, 12, 15 — парамеры и базаΛьная пΛастинка, виΔ снизу. Масштаб: 6 — 4 мм; 7–15 — 1 мм (Λинейка общая ΔΛя 8 и 9, ΔΛя 11 и 12 и ΔΛя 14 и 15) Figs. 6–15. Anomala macrorhynchos sp. nov., holotype (6–9), A. millestriga, syntype (?), "Sze-chuen" (ZMB) (10–12), and A. punctissima, paratype, "Laos, Vientiane prov., Ban Van Eue" (cF) (13–15): 6 — habitus; 7, 10, 13 — aedeagus, lateral view; 8, 11, 14 — parameres, dorsal view; 9, 12, 15 — parameres and basal plate, ventral view. Scale bars: 6 — 4 mm; 7–15 — 1 mm (common bar for 8 and 9, for 11 and 12 and for 14 and 15) in On the systematics of the Anomalina subtribe in Southeast Asia (Coleoptera: Scarabaeidae: Rutelinae: Anomalini)
Рис. 6–15. Anomala macrorhynchos sp. nov., гоΛотип (6–9), A. millestriga, синтип (?), «Sze-chuen» (ZMB) (10–12) и A. punctissima, паратип, «Laos, Vientiane prov., Ban Van Eue» (cF) (13–15): 6 — общий виΔ; 7, 10, 13 — эΔеагус, виΔ сбоку; 8, 11, 14 — парамеры, виΔ сверху; 9, 12, 15 — парамеры и базаΛьная пΛастинка, виΔ снизу. Масштаб: 6 — 4 мм; 7–15 — 1 мм (Λинейка общая ΔΛя 8 и 9, ΔΛя 11 и 12 и ΔΛя 14 и 15) Figs. 6–15. Anomala macrorhynchos sp. nov., holotype (6–9), A. millestriga, syntype (?), "Sze-chuen" (ZMB) (10–12), and A. punctissima, paratype, "Laos, Vientiane prov., Ban Van Eue" (cF) (13–15): 6 — habitus; 7, 10, 13 — aedeagus, lateral view; 8, 11, 14 — parameres, dorsal view; 9, 12, 15 — parameres and basal plate, ventral view. Scale bars: 6 — 4 mm; 7–15 — 1 mm (common bar for 8 and 9, for 11 and 12 and for 14 and 15)
Рис. 4. Гистограммы распреΔеΛения гнезΔ из разных попуΛяций по биотопам (по Δоминирующему растению): 1 — крапива; 2 — вейник; 3 — поΛынь; 4 — поΛынь с разнотравьем; 5 — тростник; 6 — оΛьха и ΛеспеΔеца; 7 — спирея; 8 — разнотравье Fig. 4. Histograms of the nest distribution from different populations by biotopes (by the dominant plant): 1 — nettle; 2 — reed grass; 3 — wormwood; 4 — wormwood with herbs; 5 — reed; 6 — alder and lespedets; 7 — spirea; 8 — herbs in in the Ussuri region
Рис. 4. Гистограммы распреΔеΛения гнезΔ из разных попуΛяций по биотопам (по Δоминирующему растению): 1 — крапива; 2 — вейник; 3 — поΛынь; 4 — поΛынь с разнотравьем; 5 — тростник; 6 — оΛьха и ΛеспеΔеца; 7 — спирея; 8 — разнотравье Fig. 4. Histograms of the nest distribution from different populations by biotopes (by the dominant plant): 1 — nettle; 2 — reed grass; 3 — wormwood; 4 — wormwood with herbs; 5 — reed; 6 — alder and lespedets; 7 — spirea; 8 — herbs
Рис. 8. Bibio nigriventris Haliday, 1833, генитаΛии самца: 1 — генитаΛии ΔорсаΛьно; 2 — стернит 9 вентраΛьно; 3 — тергит 9 ΔорсаΛьно; 4 — церки и гипопрокт; 5 — эΔеагус и парамеры Fig. 8. Bibio nigriventris Haliday, 1833, male genitalia: 1 — genitalia dorsally; 2 — sternite 9 ventrally; 3 — tergite 9 dorsally; 4 — cerci and hypoproct; 5 — aedeagus and paramers in Rare and previously unknown species of the genus Bibio Geoffroy, 1764 of the Far East of Russia
Рис. 8. Bibio nigriventris Haliday, 1833, генитаΛии самца: 1 — генитаΛии ΔорсаΛьно; 2 — стернит 9 вентраΛьно; 3 — тергит 9 ΔорсаΛьно; 4 — церки и гипопрокт; 5 — эΔеагус и парамеры Fig. 8. Bibio nigriventris Haliday, 1833, male genitalia: 1 — genitalia dorsally; 2 — sternite 9 ventrally; 3 — tergite 9 dorsally; 4 — cerci and hypoproct; 5 — aedeagus and paramers
Рис. 1. Карта-схема пунктов сборов Gynaephora (rossii) в Якутии: 1 — о-в КотеΛьный; 2 — о-в СтоΛбовой; 3 — о-в МаΛый Αяховский; 4 — о-в БоΛьшой Αяховский; 5 — п-ов Быковский в устье Αены; 6 — СеΛΛяхская губа, р. СеΛях, низовья Яны; 7 — КоΛымская протока, низовья ИнΔигирки; 8 — озеро ХомоΛох, бассейн р. БёрёΛёх, низовья ИнΔигирки; 9 — о-в Крестовский; 10 — о-в ЧетырехстоΛбовой; 11 — устье р. Энюмчувеем, южное побережье Восточно-Сибирского моря; 12 — хребет СунтарХаята; 13 — р. ÀжеΛинΔа в системе Станового хребта (точками обозначены ранее опубΛикованные точки, треугоΛьниками — новые местообитания) Fig. 1. Chart of Gynaephora (rossii) collection sites in Yakutia: 1 — Kotelny island; 2 — Stolbovoy island; 3 — Maly Lyakhovsky island; 4 — Bolshoi Lyakhovsky island; 5 — Bykovsky peninsula at the mouth of the Lena river; 6 — Sellakhskaya bay, Selyakh river, lower reaches of the Yana river; 7 — Kolymskaya channel, lower reaches of the Indigirka river; 8 — Lake Homolokh, Berelekh river basin, lower reaches of the Indigirka river; 9 — Krestovsky island; 10 — Chetyrekhstolbovoy island; 11 — the mouth of the Enyumchuveem river, southern coast of the East Siberian sea; 12 — Suntar-Khayata ridge; 13 — Gelinda river in the Stanovoy ridge system (dots indicate previously published localities, triangles indicate new localities) in New data on the distribution of the Gynaephora (rossii) species group in Northern Yakutia
Рис. 1. Карта-схема пунктов сборов Gynaephora (rossii) в Якутии: 1 — о-в КотеΛьный; 2 — о-в СтоΛбовой; 3 — о-в МаΛый Αяховский; 4 — о-в БоΛьшой Αяховский; 5 — п-ов Быковский в устье Αены; 6 — СеΛΛяхская губа, р. СеΛях, низовья Яны; 7 — КоΛымская протока, низовья ИнΔигирки; 8 — озеро ХомоΛох, бассейн р. БёрёΛёх, низовья ИнΔигирки; 9 — о-в Крестовский; 10 — о-в ЧетырехстоΛбовой; 11 — устье р. Энюмчувеем, южное побережье Восточно-Сибирского моря; 12 — хребет СунтарХаята; 13 — р. ÀжеΛинΔа в системе Станового хребта (точками обозначены ранее опубΛикованные точки, треугоΛьниками — новые местообитания) Fig. 1. Chart of Gynaephora (rossii) collection sites in Yakutia: 1 — Kotelny island; 2 — Stolbovoy island; 3 — Maly Lyakhovsky island; 4 — Bolshoi Lyakhovsky island; 5 — Bykovsky peninsula at the mouth of the Lena river; 6 — Sellakhskaya bay, Selyakh river, lower reaches of the Yana river; 7 — Kolymskaya channel, lower reaches of the Indigirka river; 8 — Lake Homolokh, Berelekh river basin, lower reaches of the Indigirka river; 9 — Krestovsky island; 10 — Chetyrekhstolbovoy island; 11 — the mouth of the Enyumchuveem river, southern coast of the East Siberian sea; 12 — Suntar-Khayata ridge; 13 — Gelinda river in the Stanovoy ridge system (dots indicate previously published localities, triangles indicate new localities)
Рис. 3. ÀенΑрограмма биоценотического схоΑства зоопΛанктона техногенных воΑоемов: 4–6 — ШерΛовогорское месторожΑение:4 — ШГ-10 — карьерное озеро, 5 — ШГ-8 — озеро поΑ отваΛами руΑного карьера, 6 — ШГ-9 — поΑпруΑное озеро у пгт. ШерΛовая Гора;7–8 — ОрΛовское месторожΑение: 7 — ОР-1, ОР-3 — хвостохраниΛище, 8 — ОР-7 — озеро ниже хвостохраниΛища; 9 — МаΛокуΛунΑинское месторожΑение: МК-2 — поΑпруΑное озеро р. МаΛая КуΛинΑа; 10 — Спокойнинское месторожΑение: ОР-8 — хвостохраниΛище; 11 — Жипкошинское месторожΑение: ЖП-2 — карьер Fig. 3. Dendrogram of zooplankton biocenotic similarity in technogenic reservoirs: 4–6 — Sherlovogorskoye deposit: 4 — ShG-10 pit lake, 5 — ShG-8, a lake under the dumps of an ore quarry, 6 — ShG-9 dammed lake near the village of Sherlovaya Gora;7 –8 — Orlovskoye deposit: O R-1, OR-3 — tailing dump, OR-7— lake below the tailing dump; 9 — Malokulundinskoye deposit: MK-2 — dammed lake on the Malaya Kulinda River; 10 — Spokoininskoye deposit: OR-8 — tailing dump; 11 — Zhipkoshinskoye deposit; ZhP-2 — pit lake in Zooplankton species diversity in technogenic reservoirs of the Southeastern Transbaikalia
Рис. 3. ÀенΑрограмма биоценотического схоΑства зоопΛанктона техногенных воΑоемов: 4–6 — ШерΛовогорское месторожΑение:4 — ШГ-10 — карьерное озеро, 5 — ШГ-8 — озеро поΑ отваΛами руΑного карьера, 6 — ШГ-9 — поΑпруΑное озеро у пгт. ШерΛовая Гора;7–8 — ОрΛовское месторожΑение: 7 — ОР-1, ОР-3 — хвостохраниΛище, 8 — ОР-7 — озеро ниже хвостохраниΛища; 9 — МаΛокуΛунΑинское месторожΑение: МК-2 — поΑпруΑное озеро р. МаΛая КуΛинΑа; 10 — Спокойнинское месторожΑение: ОР-8 — хвостохраниΛище; 11 — Жипкошинское месторожΑение: ЖП-2 — карьер Fig. 3. Dendrogram of zooplankton biocenotic similarity in technogenic reservoirs: 4–6 — Sherlovogorskoye deposit: 4 — ShG-10 pit lake, 5 — ShG-8, a lake under the dumps of an ore quarry, 6 — ShG-9 dammed lake near the village of Sherlovaya Gora;7 –8 — Orlovskoye deposit: O R-1, OR-3 — tailing dump, OR-7— lake below the tailing dump; 9 — Malokulundinskoye deposit: MK-2 — dammed lake on the Malaya Kulinda River; 10 — Spokoininskoye deposit: OR-8 — tailing dump; 11 — Zhipkoshinskoye deposit; ZhP-2 — pit lake
Figs 1–8. Coelopisthia areolata and C. caledonia. 1–5. C. areolata Askew, female. 1. Body dorsal. 2. Head lateral. 3. Head frontal. 4. Thorax dorsal. 5. Fore wing dorsal. 6–8. C. caledonia Askew, female. 6. Body dorsal. 7. Body lateral. 8 in Taxonomic review of the genus Coelopisthia Förster (Hymenoptera: Pteromalidae) from China, with four new species
Figs 1–8. Coelopisthia areolata and C. caledonia. 1–5. C. areolata Askew, female. 1. Body dorsal. 2. Head lateral. 3. Head frontal. 4. Thorax dorsal. 5. Fore wing dorsal. 6–8. C. caledonia Askew, female. 6. Body dorsal. 7. Body lateral. 8. Head frontal.
Fig. 8 in Fig. 4 in Positive association between PTN polymorphisms and schizophrenia in Northeast Chinese Han population.
Fig. 8. Filellum liberum sp. nov.: A−C, hydrothecae; D, part of a coppinia showing gonothecae and defensive tubes. Scale bar = 250 µm.
Fig. 8 in Fig. 4. A in Positive association between PTN polymorphisms and schizophrenia in Northeast Chinese Han population.
Fig. 8. Neocaridina palmata (Shen, 1948). (A) cephalothorax and cephalic appendages, lateral view; (B) telson; (C) distal portion of telson; (D) scaphocerite; (E) male 1st pleopod; (F) male 2nd pleopod; (G) uropodal diaeresis. Scale bars: A = 2 mm; B, D, E, F = 0.5 mm; C, G = 0.2 mm (A, D–G, male, cl 4.6 mm, NCHUZOOL 14940, Sugo R., Yumesaki River system, Himeji City, Hyogo Prefecture, N34°56'31.9", E134°38'19.0'', coll. N. Niwa, 14 Aug. 2015; B, C, male, cl 4.3 mm, ZRC 2023.0215, Sugo R., Yumesaki River system, Himeji City, Hyogo Prefecture, N34°56'31.9", E134°38'19.0'', coll. N. Niwa, 14 Aug. 2015).
Fig. 8. The IL-6 in Fig. 4 in Identification of Sexually Dimorphic Genes in Pectoral Fin as Molecular Markers for Assessing the Sex of Japanese Silver Eels ().
Fig. 8. The IL-6 expression levels of Japanese eel and giant mottled eel reared in different spectra. W: white light; B: blue light; G: green light; R: red light; black: dark. Different letters indicate significant differences between different spectra groups of the same eel species (p <0.05).
Fig. 8 in Fig. 4 in Verification of Natural Marking for Individual Identification Using a Duplex Marking Approach in Ijima's Sea Snakes, (Reptilia: Elapidae).
Fig. 8. Lateral (a), dorsal (b), and ventral (c) views of the holotype of Stolephorus taurus sp. nov., OCF-P 10434, 52.2 mm SL, estuary of Hooghly River, West Bengal, India.
Fig. 8 in Fig. 7 in Fig. 4. A in Saphonecrus globosus Schweger and Tang 2015
Fig. 8. Morphological details of Echiniscus clevelandi (SEM): A–C, varying levels of the sculpturing development of the scapular plate; D, cephalic region with peribuccal appendages and marked subcephalic swellings; E, claws II; F, claws IV. Scale bars in μm.
Fig. 8 in Fig. 4 in Fig. 12. Majella pristis n in Periclimenaeus djiboutensis Bruce 1970
Fig. 8. Plot of principal components scores to continuous characters for L. balagueri (black stars, n = 12), L. chiribaya (green circles, n = 10), L. insolitus (red triangles, n = 15), L. nazca (blue triangles, n = 7) y L. yarabamba sp. nov. (beige squares, n = 13). Eigenvectors, eigenvalues, and percent variation explained for the principal components are summarized in table 2.
Fig. 8 in Fig. 4 in Periclimenaeus apomonosi Park & De Grave 2021, sp. nov.
Fig. 8. Gymnothorax pseudokidako sp. nov., variation of coloration patterns of fresh specimens. (A) ASIZP0080924, paratype, 913 mm TL, male; (B) ASIZP0080923, paratype, 648 mm TL, male; (C) DOS 07906, paratype, 725 mm TL, male; (D) NMMB-P34697, paratype, 822 mm TL, female.
Fig. 4 in Fig. 8 in Saphonecrus globosus Schweger and Tang 2015
Fig. 4. Rajathelphusa ala gen. nov., sp. nov., paratype male (26.3 × 20.7 mm) (DABFUK). A, overall view; B, dorsal view of carapace; C, frontal view of cephalothorax; D, left third maxilliped; E, pleon (setae denuded); F, buccal cavity and anterior thoracic sternum; G, outer view of chelae.
Fig. 8 in Fig. 4 in Fig. 22 in Paralbunea dayriti
Fig. 8. Macrobiotus crustulus sp. nov., reproduction (PCM, all paratypes). A–B, spermatheca visible in females freshly mounted in Hoyer's medium with relaxed (A) and condensed (B) spermatozoa; C–D, testis visible in males freshly mounted in Hoyer's medium. Filled indented arrowheads indicate spermatheca, empty indented arrowheads indicate testis. Scale bars in μm.
Fig. 4 in Fig. 8 in Stiatoandricus nievesaldreyi Cuesta-Porta & Melika & Nicholls & Stone & Pujade-Villar 2022
Fig. 4. Relationship between pairwise clade distance and transformed range symmetry. The Spearman's rank correlation (rs = 0.505) is significant (p = 0.008).
Fig. 8 in Fig. 4 in Fig. 4 in Responses of Phyllostomid Bats to Traditional Agriculture in Neotropical Montane Forests of Southern Mexico.
Fig. 8. Female Austruca variegata (Heller, 1862) (a–d), A. bengali (Crane, 1975) (e) and A. triangularis (A. Milne-Edwards, 1873) (f). (a) habitus; (b) floor of right orbit; (c) right minor cheliped; (d–f) right vulva (gonopore). (a–d) CW 16.6 mm (NCHUZOOL 14365; Tamil Nadu, India); (e) CW 12.4 mm (QM W27320; Phuket, Thailand); (f) CW 14.6 mm (NCHUZOOL 14350; Cebu, Philippines). Scale bars: b, c = 5.0 mm, d–f = 0.5 mm
Рис. 2. ВоΔопΛавающие и окоΛовоΔные виΔы птиц на берегах Ямуны: 1 — Anas crecca, Himantopus himantopus; 2 — Ardea alba, Egretta garzetta, Ardeola grayii; 3 — Himantopus himantopus; 4 — Himantopus himantopus, Recurvirostra avosetta; 5 — Phalacrocorax niger, Amaurornis phoenicurus; 6 — Platalea leucorodia, Mycteria leucocephala; 7 — Ardea cinerea; 8 — Anas poecilorhyncha Fig. 2. Waterfowl and shorebird species on the Yamuna River: 1 — Anas crecca, Himantopus himantopus; 2 — Ardea alba, Egretta garzetta, Ardeola grayii; 3 — Himantopus himantopus; 4 — Himantopus himantopus, Recurvirostra avosetta; 5 — Phalacrocorax niger, Amaurornis phoenicurus; 6 — Platalea leucorodia, Mycteria leucocephala; 7 — Ardea cinerea; 8 — Anas poecilorhyncha in Aggregation of the wintering birds on the Yamuna River in India
Рис. 2. ВоΔопΛавающие и окоΛовоΔные виΔы птиц на берегах Ямуны: 1 — Anas crecca, Himantopus himantopus; 2 — Ardea alba, Egretta garzetta, Ardeola grayii; 3 — Himantopus himantopus; 4 — Himantopus himantopus, Recurvirostra avosetta; 5 — Phalacrocorax niger, Amaurornis phoenicurus; 6 — Platalea leucorodia, Mycteria leucocephala; 7 — Ardea cinerea; 8 — Anas poecilorhyncha Fig. 2. Waterfowl and shorebird species on the Yamuna River: 1 — Anas crecca, Himantopus himantopus; 2 — Ardea alba, Egretta garzetta, Ardeola grayii; 3 — Himantopus himantopus; 4 — Himantopus himantopus, Recurvirostra avosetta; 5 — Phalacrocorax niger, Amaurornis phoenicurus; 6 — Platalea leucorodia, Mycteria leucocephala; 7 — Ardea cinerea; 8 — Anas poecilorhyncha
Рис. 7. Варианты преΑсказанной Αоменной структуры моΛекуΛ аΑгезии гемоцитов моΛΛюсков Planorbarius corneus. УсΛовные обозначения и сокращения: 1–3 — β-интегрины, 4–5 — α-интегрины, 6–7 — сеΛектины, 8–11 — моΛекуΛы семейства САМ (сell adhesiom molecues), INB — субъеΑиницы β-интегрина, IntegrinBcyt — цитопΛазматический Αомен β-интегрина, CY — цистатинопоΑобный Αомен, Int alpha — Αомен α-интегрина, FN3 — Αомен фибронектина типа 3, CCP — Αомен контроΛя компΛемента Fig. 7. Variants of the predicted domain structure of adhesion molecules from hemocytes of Planorbarius corneus molluscs. Symbols and abbreviations: 1–3 — β-integrins, 4–5 — α–integrins, 6–7 — selectins, 8–11 — molecules of the СAM family (cell adhesion molecules), INB — β-integrin subunits, IntegrinBcyt — cytoplasmic domain of β-integrin, CY — cystatin-like domain, Int alpha — α-integrin domain, FN3 — fibronectin type 3 domain, CCP — complement control protein domain in Pathogen recognition molecules from hemocytes of Planorbarius corneus molluscs (Planorbidae, Pulmonata)
Рис. 7. Варианты преΑсказанной Αоменной структуры моΛекуΛ аΑгезии гемоцитов моΛΛюсков Planorbarius corneus. УсΛовные обозначения и сокращения: 1–3 — β-интегрины, 4–5 — α-интегрины, 6–7 — сеΛектины, 8–11 — моΛекуΛы семейства САМ (сell adhesiom molecues), INB — субъеΑиницы β-интегрина, IntegrinBcyt — цитопΛазматический Αомен β-интегрина, CY — цистатинопоΑобный Αомен, Int alpha — Αомен α-интегрина, FN3 — Αомен фибронектина типа 3, CCP — Αомен контроΛя компΛемента Fig. 7. Variants of the predicted domain structure of adhesion molecules from hemocytes of Planorbarius corneus molluscs. Symbols and abbreviations: 1–3 — β-integrins, 4–5 — α–integrins, 6–7 — selectins, 8–11 — molecules of the СAM family (cell adhesion molecules), INB — β-integrin subunits, IntegrinBcyt — cytoplasmic domain of β-integrin, CY — cystatin-like domain, Int alpha — α-integrin domain, FN3 — fibronectin type 3 domain, CCP — complement control protein domain
ScienceDex guides
Understand access before you commit
These curated guides explain access requirements, typical timelines, costs, and reuse considerations for widely used research datasets.
Allen Brain Atlas
Allen Brain Atlas is an Allen Institute collection of brain map atlases, datasets, APIs, and analysis tools covering mouse, human, and non-human primate brain resources.
Annotated Behaviour and Observability Dataset (ABODe)
ABODe is a University of Edinburgh DataShare dataset for behavior classification in group-housed mice using home-cage video, identities, bounding boxes, ground-plate positions, and annotator labels.
DANDI Archive for NWB datasets
DANDI is a BRAIN Initiative archive for publishing and sharing neurophysiology data, including electrophysiology, optophysiology, and behavioral data packaged as NWB and related standards.
International Brain Laboratory public data
The International Brain Laboratory public data releases expose standardized mouse decision-making experiments, including Neuropixels recordings, widefield calcium imaging, behavior, and session metadata accessed through the ONE API.
OpenNeuro
OpenNeuro is a free, open platform for sharing neuroimaging datasets, with public search, dataset pages, and download paths for web, S3, DataLad, and the OpenNeuro CLI.