Find research datasets worth reusing
Search datasets from major research repositories and use ShareScore to quickly assess how well each record supports discovery, access, and reuse.
450
datasets available to search
ShareScore release 0.9.0
Dataset results
450 results for “hooks”
Leptosiphon californicus Hook. (BR0000025022476)
Belgium Herbarium image of <a href="https://www.plantentuinmeise.be">Meise Botanic Garden</a>.
Lepidium smithii Hook. (BR0000026141466V)
Belgium Herbarium image of <a href="https://www.plantentuinmeise.be">Meise Botanic Garden</a>.
Nemophila menziesii Hook. & Arn. (BR0000012060863)
Belgium Herbarium image of <a href="https://www.plantentuinmeise.be">Meise Botanic Garden</a>.
Nemophila menziesii Hook. & Arn. (BR0000012061198)
Belgium Herbarium image of <a href="https://www.plantentuinmeise.be">Meise Botanic Garden</a>.
Navarretia squarrosa (Eschsch.) Hook. & Arn. (BR0000024857703)
Belgium Herbarium image of <a href="https://www.plantentuinmeise.be">Meise Botanic Garden</a>.
Navarretia squarrosa (Eschsch.) Hook. & Arn. (BR0000012418848)
Belgium Herbarium image of <a href="https://www.plantentuinmeise.be">Meise Botanic Garden</a>.
Nemophila menziesii Hook. & Arn. (BR0000010882160)
Belgium Herbarium image of <a href="https://www.plantentuinmeise.be">Meise Botanic Garden</a>.
Navarretia squarrosa (Eschsch.) Hook. & Arn. (BR0000011205128)
Belgium Herbarium image of <a href="https://www.plantentuinmeise.be">Meise Botanic Garden</a>.
Navarretia squarrosa (Eschsch.) Hook. & Arn. (BR0000024857697)
Belgium Herbarium image of <a href="https://www.plantentuinmeise.be">Meise Botanic Garden</a>.
Navarretia squarrosa (Eschsch.) Hook. & Arn. (BR0000011205456)
Belgium Herbarium image of <a href="https://www.plantentuinmeise.be">Meise Botanic Garden</a>.
Nemophila menziesii Hook. & Arn. (BR0000012062522)
Belgium Herbarium image of <a href="https://www.plantentuinmeise.be">Meise Botanic Garden</a>.
Fig. 15. – Grimmia tortuosa Hook. f in A revision of Grimmia (Grimmiaceae) from South Africa and Lesotho
Fig. 15. – Grimmia tortuosa Hook. f. & Wilson: A. Plant; B. Transverse section of stem, with central strand; C. Transverse section of stem, without central strand; D. Leaf; E. Outlines of transverse section of leaf; F. Cells in leaf base; G. Cells at leaf margin in the broadest part of leaf; H. Transverse section of leaf[A-H: Hedderson 14459, BOL]
Fig. 6. – Grimmia fuscolutea Hook. A in A revision of Grimmia (Grimmiaceae) from South Africa and Lesotho
Fig. 6. – Grimmia fuscolutea Hook. A. Transverse section of stem; B. Leaf; C. Outlines of transverse sections of leaf; D. Cells in leaf base; E. Cells in transitional part; F, G, H. Transverse sections of leaves. [A-E, H: Hilliard & Burtt 7115, BOL; F: Schelpe 7682, BOL; G: Schelpe 2115, PRE]
Рис. 2. Крючки глохидиев Colletopterum anatinum: А – оЗ. Красное; B – оЗ. Арахлей. МасШтабные линейки 20 мкм. Fig. 2. Hooks of glochidia of Colletopterum anatinum: А – Lake Krasnoye; B – Lake Arakhley. Scale bars – 20 µm. in Morphology of glochidia of the anodontine bivalves of the genus Colletopterum (Unionidae) inhabiting water basins of Khakasia Republic and Chitinskaya Territory
Рис. 2. Крючки глохидиев Colletopterum anatinum: А – оЗ. Красное; B – оЗ. Арахлей. МасШтабные линейки 20 мкм. Fig. 2. Hooks of glochidia of Colletopterum anatinum: А – Lake Krasnoye; B – Lake Arakhley. Scale bars – 20 µm.
РИС. 11. ИЗображениЯ крючков глохидиев при раЗной настройке Яркости и контрастности (Anemina arcaeformis, р. Сита, Хабаровский кр.). А. Оптимальные Яркость и контрастность. В. ИЗбыточнаЯ контрастность. С. ИЗбыточнаЯ Яркость. МасШтаб 20 мкм. Микроскоп Zeiss EVO 40, напыление углеродом. FIG. 11. Imagines of glochidia hooks with different brightness and contrast value (Anemina arcaeformis, Sita River, Khabarovsk Krai). A. Optimal brightness and contrast. B. Excessive contrast. C. Excessive brightness. Scale bars 20 μm. Zeiss EVO 40 microscope, sputter coating with carbon. in Методика подготовки раковин глохидиев (Bivalvia, Unionidae) длЯ работы на сканируюЩем Электронном микроскопе
РИС. 11. ИЗображениЯ крючков глохидиев при раЗной настройке Яркости и контрастности (Anemina arcaeformis, р. Сита, Хабаровский кр.). А. Оптимальные Яркость и контрастность. В. ИЗбыточнаЯ контрастность. С. ИЗбыточнаЯ Яркость. МасШтаб 20 мкм. Микроскоп Zeiss EVO 40, напыление углеродом. FIG. 11. Imagines of glochidia hooks with different brightness and contrast value (Anemina arcaeformis, Sita River, Khabarovsk Krai). A. Optimal brightness and contrast. B. Excessive contrast. C. Excessive brightness. Scale bars 20 μm. Zeiss EVO 40 microscope, sputter coating with carbon.
РИС. 7. НедостаточнаЯ промывка раковин глохидиев после очиЩениЯ в Щелочи (5% КОН). А, С. «Замыленность» пор наружной поверхности створок (Cristaria tuberculata, оЗ. Ханка, Приморский кр.). B. Остаток Щелочи, выпавШий кристаллами на поверхности личинки (Unio dembeae, р. Дуко, ЭфиопиЯ). D. Капли раствора Щелочи (укаЗаны стрелками) на поверхности Шипов крючка (Nodularia douglasiae, р. Гион, о-в Хонсю, ЯпониЯ). МасШтаб 5 мкм (А, С), 2 мкм (B, D). Микроскоп Zeiss MERLIN, напыление углеродом (А, В), хромом (С, D). FIG. 7. Insufficient rinsing of glochidia after cleaning in alkali (5% KOH). A, C. «Blurredness» of the exterior valve pores (Cristaria tuberculata, Khanka Lake, Primorsky Krai). B. Precipitation of alkali crystals on the exterior glochidia surface (Unio dembeae, Duko River, Ethiopia). D. Drops of alkali (indicated by arrows) on the hook spines (Nodularia douglasiae, Gion River, Honshu Island, Japan). Scale bars 5 μm (A, C), 2 μm (B, D). Zeiss MERLIN microscope, sputter coating with carbon (A, B) and chromium (C, D). in Методика подготовки раковин глохидиев (Bivalvia, Unionidae) длЯ работы на сканируюЩем Электронном микроскопе
РИС. 7. НедостаточнаЯ промывка раковин глохидиев после очиЩениЯ в Щелочи (5% КОН). А, С. «Замыленность» пор наружной поверхности створок (Cristaria tuberculata, оЗ. Ханка, Приморский кр.). B. Остаток Щелочи, выпавШий кристаллами на поверхности личинки (Unio dembeae, р. Дуко, ЭфиопиЯ). D. Капли раствора Щелочи (укаЗаны стрелками) на поверхности Шипов крючка (Nodularia douglasiae, р. Гион, о-в Хонсю, ЯпониЯ). МасШтаб 5 мкм (А, С), 2 мкм (B, D). Микроскоп Zeiss MERLIN, напыление углеродом (А, В), хромом (С, D). FIG. 7. Insufficient rinsing of glochidia after cleaning in alkali (5% KOH). A, C. «Blurredness» of the exterior valve pores (Cristaria tuberculata, Khanka Lake, Primorsky Krai). B. Precipitation of alkali crystals on the exterior glochidia surface (Unio dembeae, Duko River, Ethiopia). D. Drops of alkali (indicated by arrows) on the hook spines (Nodularia douglasiae, Gion River, Honshu Island, Japan). Scale bars 5 μm (A, C), 2 μm (B, D). Zeiss MERLIN microscope, sputter coating with carbon (A, B) and chromium (C, D).
РИС. 5. ЗагрЯЗнение готовых обраЗцов длЯ СЭМ при длительном хранении в негерметичных условиЯх (A–C) либо при хранении проШедШих процедуру мацерированиЯ беЗ последуюЩего обеЗЗараживаниЯ (D, E). A–С. Бактерии на поверхности глохидиев (Nodularia douglasiae, р. ИлистаЯ, бассейн оЗ. Ханка, Приморский кр.). А. ВнеШний вид глохидиЯ, основное ЗагрЯЗнение на створке в верхней части фото. В. Крючок глохидиЯ, основное ЗагрЯЗнение в левой части фото. С. Створка, вид иЗнутри. D. Единичные бактерии на створке глохидиЯ, вид иЗнутри (Kunashiria japonica, оЗ. Утиное, о-в Зелёный, Курильские о-ва). E. Гифы гриба на створке глохидиЯ, вид на наружную пору (Beringiana beringiana, оЗ. АЗабачье, Камчатка). МасШтаб 50 мкм (А, C), 10 мкм (В, D), 1 мкм (Е). Микроскопы Zeiss MERLIN (А, B, C, E), Zeiss EVO 40 (D), напыление хромом (А–С), Золотом (D), углеродом (Е). FIG. 5. Contamination of the SEM ready-made samples during long-term storage under unsealed conditions (A–C) or during storage the samples that have passed the maceration procedure without subsequent disinfection (D, E). A–C. Bacteria on the glochidia surface (Nodularia douglasiae, Ilistaya River, Khanka Lake basin, Primorsky Krai). A. Glochidium with the main pollution on the valve in the upper part of the photo. B. Hook with the main pollution on the left side of the photo. C. Interior valve. D. Bacteria on the interior valve (Kunashiria japonica, Utinoe Lake, Zeliony Island, Kuril Islands). E. Fungal hyphae on the pore of exterior valve (Beringiana beringiana, Azabachye Lake, Kamchatka). Scale bars 50 μm (A, C), 10 μm (B, D), 1 μm (E). Zeiss MERLIN (A, B, C, E) and Zeiss EVO 40 (D) microscopes, sputter coating with chromium (A–C), gold (D), and carbon (E). in Методика подготовки раковин глохидиев (Bivalvia, Unionidae) длЯ работы на сканируюЩем Электронном микроскопе
РИС. 5. ЗагрЯЗнение готовых обраЗцов длЯ СЭМ при длительном хранении в негерметичных условиЯх (A–C) либо при хранении проШедШих процедуру мацерированиЯ беЗ последуюЩего обеЗЗараживаниЯ (D, E). A–С. Бактерии на поверхности глохидиев (Nodularia douglasiae, р. ИлистаЯ, бассейн оЗ. Ханка, Приморский кр.). А. ВнеШний вид глохидиЯ, основное ЗагрЯЗнение на створке в верхней части фото. В. Крючок глохидиЯ, основное ЗагрЯЗнение в левой части фото. С. Створка, вид иЗнутри. D. Единичные бактерии на створке глохидиЯ, вид иЗнутри (Kunashiria japonica, оЗ. Утиное, о-в Зелёный, Курильские о-ва). E. Гифы гриба на створке глохидиЯ, вид на наружную пору (Beringiana beringiana, оЗ. АЗабачье, Камчатка). МасШтаб 50 мкм (А, C), 10 мкм (В, D), 1 мкм (Е). Микроскопы Zeiss MERLIN (А, B, C, E), Zeiss EVO 40 (D), напыление хромом (А–С), Золотом (D), углеродом (Е). FIG. 5. Contamination of the SEM ready-made samples during long-term storage under unsealed conditions (A–C) or during storage the samples that have passed the maceration procedure without subsequent disinfection (D, E). A–C. Bacteria on the glochidia surface (Nodularia douglasiae, Ilistaya River, Khanka Lake basin, Primorsky Krai). A. Glochidium with the main pollution on the valve in the upper part of the photo. B. Hook with the main pollution on the left side of the photo. C. Interior valve. D. Bacteria on the interior valve (Kunashiria japonica, Utinoe Lake, Zeliony Island, Kuril Islands). E. Fungal hyphae on the pore of exterior valve (Beringiana beringiana, Azabachye Lake, Kamchatka). Scale bars 50 μm (A, C), 10 μm (B, D), 1 μm (E). Zeiss MERLIN (A, B, C, E) and Zeiss EVO 40 (D) microscopes, sputter coating with chromium (A–C), gold (D), and carbon (E).
Fig. 1 in Echinococcus multilocularis (Cestoda, Cyclophyllidea, Taeniidae): origin, differentiation and functional ultrastructure of the oncospheral tegument and hook region membrane
Fig. 1 Schematic diagram illustrating the origin (a) and beginning of differentiation (b) of the oncospheral tegument and hook region membrane in the preoncospheral stage of embryonic development of Echinococcus multilocularis. All structures involved in formation of the oncospheral tegument and hook region membrane are marked in orange colour. Two red arrows show direction of progressive sinking or migration of the binucleate subtegumental perikaryon which sunk deep into the central region of differentiating oncosphere. HFC hook-forming cell or oncoblast, HP hook primordium, HRC hook region cavity, IE inner envelope, m mitochondria, N1, N2 two nuclei of the binucleate complex primordium, N nucleus of hook-forming cell, PBC binucleate complex primordium, V vesicles in the outer cytoplasm, undergoing progressive fusion
Fig. 6 in Echinococcus multilocularis (Cestoda, Cyclophyllidea, Taeniidae): origin, differentiation and functional ultrastructure of the oncospheral tegument and hook region membrane
Fig. 6 TEM micrographs of mature eggs of Echinococcus multilocularis. a Part of the oncosphere showing the high concentration of beta-glycogen particles (β-gl) in the musculature of oncospheral hooks (HM) as indicated by the cytochemical test of Thiéry. b Low-power electron micrograph illustrating the general topography of mature intrauterine egg. Note: (1) a bilateral symmetry of the oncosphere (white interrupted line) and (2) position of hook region membrane and oncospheral tegument at one pole of the hexacanth. The hook region is marked by a frame composed of interrupted black lines. EmB embryophoric blocks, GC germinative cells, GL granular layer, HRM hook region membrane, IE inner envelope, LH lateral hooks, MH median hooks, OE outer envelope, OM oncospheral membrane, PG penetration glands, SC somatic cells
Fig. 5 in Echinococcus multilocularis (Cestoda, Cyclophyllidea, Taeniidae): origin, differentiation and functional ultrastructure of the oncospheral tegument and hook region membrane
Fig. 5 High-power TEM micrographs showing ultrastructural details of the oncospheral tegument and hook region membrane. a Note two oblique sections of blades of the oncospheral hooks (HBl), surrounded by numerous long microvilli (Mv) which protrude into large cavity situated under the hook region membrane (HRM) and oncospheral membrane (OM). b Oblique section through the hook region membrane showing hook blade exit and oncospheral tegument with numerous long microvilli at its surface. DR desmosome rings, HM hook musculature, IE inner envelope
ScienceDex guides
Understand access before you commit
These curated guides explain access requirements, typical timelines, costs, and reuse considerations for widely used research datasets.
Allen Brain Atlas
Allen Brain Atlas is an Allen Institute collection of brain map atlases, datasets, APIs, and analysis tools covering mouse, human, and non-human primate brain resources.
Annotated Behaviour and Observability Dataset (ABODe)
ABODe is a University of Edinburgh DataShare dataset for behavior classification in group-housed mice using home-cage video, identities, bounding boxes, ground-plate positions, and annotator labels.
DANDI Archive for NWB datasets
DANDI is a BRAIN Initiative archive for publishing and sharing neurophysiology data, including electrophysiology, optophysiology, and behavioral data packaged as NWB and related standards.
International Brain Laboratory public data
The International Brain Laboratory public data releases expose standardized mouse decision-making experiments, including Neuropixels recordings, widefield calcium imaging, behavior, and session metadata accessed through the ONE API.
OpenNeuro
OpenNeuro is a free, open platform for sharing neuroimaging datasets, with public search, dataset pages, and download paths for web, S3, DataLad, and the OpenNeuro CLI.