Find research datasets worth reusing

Fig. 5 in Redescription of Dexiotricha colpidiopsis (Kahl, 1926) Jankowski, 1964 (Ciliophora, Oligohymenophorea) from a Hot Spring in Iceland with Identification Key for Dexiotricha species

Fig. 5. Dexiotricha species from live (A, D, F, G) and silver-stained specimens (B, C, E, H–L). (A–C) D. elliptica (from Fan et al. 2014). (D, E) D. tranquilla (from Augustin and Foissner 1992). (F) D. polystyla (from Foissner 1987). (G, H) D. granulosa (G from Behrend 1916; H from Fan et al. 2014). (I) D. media (from Peck 1974). (J, K) D. colpidiopsis (J from Fauré-Fremiet 1968; H from Jankowski 1964). (L) D. raikovi (from Jankowski 1964). Scale bars: 20 µm.

Fig. 2 in Redescription of Dexiotricha colpidiopsis (Kahl, 1926) Jankowski, 1964 (Ciliophora, Oligohymenophorea) from a Hot Spring in Iceland with Identification Key for Dexiotricha species

Fig. 2. Dexiotricha colpidiopsis from live (A–C) and after protargol-staining (D–F). (A) Ventrolateral view of a typical specimen showing the subterminal contractile vacuole (arrow). (B) Ventral view (from Kahl 1926). (C) Right lateral view showing the transverse row of cilia (arrows). (D) Ciliature of oral region. (E, F) Ventral and dorsal views of type specimen. CC, caudal cilium; M1–3, membranelles 1–3; Ma, macronucleus; Mi, micronucleus; PK, postoral kineties; PM, paroral membrane; Sc, scutica; SK, somatic kineties; SK1, first somatic kinety on right margin of buccal cavity; SKn, first somatic kinety on left margin of buccal cavity. Scale bars: 25 µm.

Fig. 4 in Redescription of Dexiotricha colpidiopsis (Kahl, 1926) Jankowski, 1964 (Ciliophora, Oligohymenophorea) from a Hot Spring in Iceland with Identification Key for Dexiotricha species

Fig. 4. Phylogenetic tree inferred by Maximum-likelihood (ML) analyses of the small SSU rRNA gene sequences. The new sequence is highlighted in bold. Numbers at the nodes are the bootstrap values of the ML and BI analyses, respectively. The mark "-" indicates discrepancies in the topologies of the ML and BI trees; thus, only the values of ML are shown in these cases. The scale bar corresponds to 5 substitutions per 100 nucleotide positions.

Fig. 3 in Redescription of Dexiotricha colpidiopsis (Kahl, 1926) Jankowski, 1964 (Ciliophora, Oligohymenophorea) from a Hot Spring in Iceland with Identification Key for Dexiotricha species

Fig. 3. Photomicrographs of Dexiotricha colpidiopsis from live (A–D; A with bright field illumination, C–D with differential interference contrast microscopy), after dry silver nitrate staining (E), and after protargol-impregnation (F–I). (A, B) Ventrolateral views showing the subterminal contractile vacuole (arrows) and the caudal cilium (arrowhead). (C) Right lateral view showing the transverse row of cilia (arrows). (D) Slightly compressed specimens showing the subterminal contractile vacuole (arrows). (E) Showing the position of the contractile vacuole pore (arrow). (F, G) Ventral and dorsal views of the type specimen. (H, I) Right and left lateral views. M1–3, membranelles 1–3; Ma, macronucleus; Mi, micronucleus; PK, postoral kinety, PM, paroral membrane. Scale bars: 25 µm.

Fig.2. The phylogenetic tree for 72 in Genetic Diversity Of (Brassica Napus L.) Spring Oilseed Rape

Fig.2. The phylogenetic tree for 72 individual of Brassica napus constructed on the basis of RAPD data: M - 'Maskot, S - 'Sw Savan', H -'Heros', U -'Ural', L -'Landmark'

Fig. 15. D. latissimus larva, Fig. 16. Dead D in Methodologicalaspects Of Study On Biologyand Development Cycles Of Dytiscus Latissimus (Coleoptera: Dytiscidae) In Laboratory Environment. Spring-Summer Period

Fig. 15. D. latissimus larva, Fig. 16. Dead D.latissimus (male) died during pupation couple of hours after metamorphosis

Fig. 9. Young D in Methodologicalaspects Of Study On Biologyand Development Cycles Of Dytiscus Latissimus (Coleoptera: Dytiscidae) In Laboratory Environment. Spring-Summer Period

Fig. 9. Young D.latissimus imago. Female couple of hours after metamorphosis.: A – immediately after metamorphosis, B – in 6 hours, C – in 24 hours (integuments gained their normal colour).

Fig.6. Instar II larva attacking a in Methodologicalaspects Of Study On Biologyand Development Cycles Of Dytiscus Latissimus (Coleoptera: Dytiscidae) In Laboratory Environment. Spring-Summer Period

Fig.6. Instar II larva attacking a caddis larva (with Fig.7. D. latissimus instar III larva exuvium on its left)

Fig.5. D in Methodologicalaspects Of Study On Biologyand Development Cycles Of Dytiscus Latissimus (Coleoptera: Dytiscidae) In Laboratory Environment. Spring-Summer Period

Fig.5. D. latissimus egg While keeping the larvae one has to also laying inside the stem of consider the fact, that these larvae have an Caltha palustris

Fig.1 in Genetic Diversity Of (Brassica Napus L.) Spring Oilseed Rape

Fig.1. DNA fingerprints from different samples of different oilseed rape cultivars obtained by PCR with primers: OPA-01-S1-S6-'SwSavan'; OPA-04-H1-H6-'Heros'; OPA-04-U1-U6-'Ural'; OPA-09-L1- L5-'Landmark'; OPA11-M1-M6-'Maskot'. M-Gene RulerTM 100 bp DNA Ladder Plus (MBI Fermentas)

Fig. 1 in Demographic And Morphometric Parameters Of The Yellow-Necked Mouse (Apodemus Flavicollis) In Late Autumn-Early Spring In Lithuania

Fig. 1. Dynamics of the age structure of A. flavicollis population in October–April 2004–2009. RESULTS

Рис. 3. РаспреΑеΛение чайковых птиц (А — тихоокеанская чайка, Б — восточносибирская чайка, В — бургомистр, Г — моевка) в Охотском море и сопреΑеΛьных воΑах Тихого океана и Японского моря по резуΛьтатам суΑовых учетов в февраΛе — мае 2020 г. (особей/ км2 на 10-минутных трансектах). СпΛошными Λиниями показаны учетные трансекты, пунктиром — 200-метровая изобата Fig. 3. Distribution of larids — (А) slaty-backed gull, (Б) Vega gull, (В) glaucous gull, (Г) blacklegged kittiwake — in the Sea of Okhotsk and adjacent waters of the Pacific Ocean and the Sea of Japan in February–May 2020 (birds/km2 on 10-minute transects). Solid lines indicate transects, dotted line indicates a 200 m isobath in Population of seabirds in the Sea of Okhotsk and adjacent waters of the Pacific Ocean and the Sea of Japan during the winter-spring period of 2020

Рис. 3. РаспреΑеΛение чайковых птиц (А — тихоокеанская чайка, Б — восточносибирская чайка, В — бургомистр, Г — моевка) в Охотском море и сопреΑеΛьных воΑах Тихого океана и Японского моря по резуΛьтатам суΑовых учетов в февраΛе — мае 2020 г. (особей/ км2 на 10-минутных трансектах). СпΛошными Λиниями показаны учетные трансекты, пунктиром — 200-метровая изобата Fig. 3. Distribution of larids — (А) slaty-backed gull, (Б) Vega gull, (В) glaucous gull, (Г) blacklegged kittiwake — in the Sea of Okhotsk and adjacent waters of the Pacific Ocean and the Sea of Japan in February–May 2020 (birds/km2 on 10-minute transects). Solid lines indicate transects, dotted line indicates a 200 m isobath

Рис. 2. РаспреΑеΛение трубконосых птиц (А — темноспинный аΛьбатрос, Б — гΛупыш, В — тонкокΛювый буревестник, Г — сизая качурка) в Охотском море и сопреΑеΛьных воΑах Тихого океана и Японского моря по резуΛьтатам суΑовых учетов в февраΛе — мае 2020 г. (особей/км2 на 10-минутных трансектах). СпΛошными Λиниями показаны учетные трансекты, пунктиром — 200-метровая изобата Fig. 2. Distribution of tubenoses — (А) Laysan albatross, (Б) Northern fulmar, (В) shorttailed shearwater, (Г) fork-tailed storm-petrel — in the Sea of Okhotsk and adjacent waters of the Pacific Ocean and the Sea of Japan in February–May 2020 (birds/km2 on 10-minute transects). Solid lines indicate transects; dotted line indicates a 200 m isobath in Population of seabirds in the Sea of Okhotsk and adjacent waters of the Pacific Ocean and the Sea of Japan during the winter-spring period of 2020

Рис. 2. РаспреΑеΛение трубконосых птиц (А — темноспинный аΛьбатрос, Б — гΛупыш, В — тонкокΛювый буревестник, Г — сизая качурка) в Охотском море и сопреΑеΛьных воΑах Тихого океана и Японского моря по резуΛьтатам суΑовых учетов в февраΛе — мае 2020 г. (особей/км2 на 10-минутных трансектах). СпΛошными Λиниями показаны учетные трансекты, пунктиром — 200-метровая изобата Fig. 2. Distribution of tubenoses — (А) Laysan albatross, (Б) Northern fulmar, (В) shorttailed shearwater, (Г) fork-tailed storm-petrel — in the Sea of Okhotsk and adjacent waters of the Pacific Ocean and the Sea of Japan in February–May 2020 (birds/km2 on 10-minute transects). Solid lines indicate transects; dotted line indicates a 200 m isobath

Рис. 1. Размещение трансект (спΛошные черные Λинии) и Αаты провеΑения учетов в Охотском море и сопреΑеΛьных воΑах Тихого океана и Японского моря в февраΛе — мае 2020 г. РыбоΛовные районы: 05.1 — Северо-Охотоморская поΑзона; 05.2 — ЗапаΑно-Камчатская поΑзона; 05.3 — Восточно-СахаΛинская поΑзона; 05.4 — Камчатско-КуриΛьская поΑзона; 03 — Северо-КуриΛьская зона; 04 — Южно-КуриΛьская зона; 06 — зона Японское море. Пунктиром показана 200-метровая изобата Fig. 1. Transect locations (solid black lines) and dates of surveys in the Sea of Okhotsk and adjacent waters of the Pacific Ocean and the Sea of Japan in February–May 2020. Codes of the fishery areas are as follows: 05.1 — Northern Sea of Okhotsk Subzone; 05.2 — West Kamchatka Subzone; 05.3 — East Sakhalin Subzone; 05.4 — Kamchatka-Kuril Subzone; 03 — North Kuril Zone; 04 — South Kuril Zone; 06 — Sea of Japan Zone. Dotted line indicates a 200 m isobath in Population of seabirds in the Sea of Okhotsk and adjacent waters of the Pacific Ocean and the Sea of Japan during the winter-spring period of 2020

Рис. 1. Размещение трансект (спΛошные черные Λинии) и Αаты провеΑения учетов в Охотском море и сопреΑеΛьных воΑах Тихого океана и Японского моря в февраΛе — мае 2020 г. РыбоΛовные районы: 05.1 — Северо-Охотоморская поΑзона; 05.2 — ЗапаΑно-Камчатская поΑзона; 05.3 — Восточно-СахаΛинская поΑзона; 05.4 — Камчатско-КуриΛьская поΑзона; 03 — Северо-КуриΛьская зона; 04 — Южно-КуриΛьская зона; 06 — зона Японское море. Пунктиром показана 200-метровая изобата Fig. 1. Transect locations (solid black lines) and dates of surveys in the Sea of Okhotsk and adjacent waters of the Pacific Ocean and the Sea of Japan in February–May 2020. Codes of the fishery areas are as follows: 05.1 — Northern Sea of Okhotsk Subzone; 05.2 — West Kamchatka Subzone; 05.3 — East Sakhalin Subzone; 05.4 — Kamchatka-Kuril Subzone; 03 — North Kuril Zone; 04 — South Kuril Zone; 06 — Sea of Japan Zone. Dotted line indicates a 200 m isobath

Рис. 4. РаспреΑеΛение чистиковых птиц (А — тонкокΛювая и тоΛстокΛювая кайры, Б — боΛьшая конюга, В — конюга-крошка, Г — топорок) в Охотском море и сопреΑеΛьных воΑах Тихого океана и Японского моря по резуΛьтатам суΑовых учетов в февраΛе — мае 2020 г. (особей/км2 на 10-минутных трансектах). СпΛошными Λиниями показаны учетные трансекты, пунктиром — 200-метровая изобата Fig. 4. Distribution of alcids — (А) common and thick-billed murres, (Б) crested auklet, (В) least auklet, (Г) tufted puffin — in the Sea of Okhotsk and adjacent waters of the Pacific Ocean and the Sea of Japan in February–May 2020 (birds/km2 on 10-minute transects). Solid lines indicate transects, dotted line indicates a 200 m isobath in Population of seabirds in the Sea of Okhotsk and adjacent waters of the Pacific Ocean and the Sea of Japan during the winter-spring period of 2020

Рис. 4. РаспреΑеΛение чистиковых птиц (А — тонкокΛювая и тоΛстокΛювая кайры, Б — боΛьшая конюга, В — конюга-крошка, Г — топорок) в Охотском море и сопреΑеΛьных воΑах Тихого океана и Японского моря по резуΛьтатам суΑовых учетов в февраΛе — мае 2020 г. (особей/км2 на 10-минутных трансектах). СпΛошными Λиниями показаны учетные трансекты, пунктиром — 200-метровая изобата Fig. 4. Distribution of alcids — (А) common and thick-billed murres, (Б) crested auklet, (В) least auklet, (Г) tufted puffin — in the Sea of Okhotsk and adjacent waters of the Pacific Ocean and the Sea of Japan in February–May 2020 (birds/km2 on 10-minute transects). Solid lines indicate transects, dotted line indicates a 200 m isobath

opencc-by-4.0Aug 2018View details →

Figure 3 in Endemic spring snails Terrestribythinella (Mollusca) as unusual material for larval case of Crunoecia irrorata (Trichoptera: Lepidostomatidae) in Transcarpathian Ukraine

Figure 3. Habitat of Crunoeсia irrorata (Curtis, 1834) larva with unusual case in Transcarpathia (Zakarpattia oblast), Ukraine: A, C, D – small stream near the tourist point "Sokolyne Berdo", Kuziy ravine, Rakhiv district, spring (May 13, 2017), B – the same locality, autumn (November 06, 2017).

opencc-by-4.0Jul 2019View details →

Figure 1 in Contribution to the knowledge of the caddisfly fauna of Montenegro - New data and records from the karstic springs of Lake Skadar basin

Figure 1. Map of the study area. The numbers correspond to spring identification numbers in Table 1.

opencc-by-4.0Dec 2020View details →

Рис. 4. РаспреΑеΛение рыб в верхнем и нижнем бьефе в периоΑ осенней миграции 2018 г. (а) и верхнем бьефе в весеннюю миграцию 2019 г. (б). Точками показаны места фиксации рыб эхоΛотом Fig. 4. Distribution of fish upstream and downstream of the reservoir during the autumn migration of 2018 (а) and upstream of the reservoir during the spring migration of 2019 (b). Points indicate the locations where fish were registered by echosounder in Dynamics and current status of the Amazar River ichthyofauna after the construction of the PPM «Polyarnaya» hydroelectric complex

Рис. 4. РаспреΑеΛение рыб в верхнем и нижнем бьефе в периоΑ осенней миграции 2018 г. (а) и верхнем бьефе в весеннюю миграцию 2019 г. (б). Точками показаны места фиксации рыб эхоΛотом Fig. 4. Distribution of fish upstream and downstream of the reservoir during the autumn migration of 2018 (а) and upstream of the reservoir during the spring migration of 2019 (b). Points indicate the locations where fish were registered by echosounder

opencc-by-4.0Dec 2022View details →

Рис. 1. Δинамика чисΛенности меΛких мΛекопитающих в Цасучейском бору: 1 — суммарная чисΛенность (особей / 100 циΛинΑро-суток); Αоминирующие виΑы: 2 — забайкаΛьский хомячок, 3 — бурозубка тунΑряная, 4 — бурозубка крошечная, 5 — поΛёвка монгоΛьская, 6 — поΛёвка РаΑΑе, 7 — красная поΛёвка; A — остепнённый сосняк, B — первичная гарь, С — старая гарь, D — повторная гарь; стреΛка указывает время прохожΑения пожара. Ось X — гг., ось Y — чисΛенность Fig. 1. Population dynamics of small mammals in the Tsasucheysky Pine Forest: 1 — total abundance (individuals / 100 cylinder-days); dominant species: 2 — Cricetulus pseudogriseus, 3 — Sorex tundrensis, 4 — S. minutissimus, 5 — Alexandromys mongolicus, 6 — Lasiopodomys raddei, 7 — Myodes rutilus; A — steppe pine forest, B — primary burns site, С — old burns site; D — repeated burns site; the arrow indicates the time of the fire. The X-axis shows years; the Y-axis shows population density in Population dynamics of small mammals after spring fires in steppe pine forest

Рис. 1. Δинамика чисΛенности меΛких мΛекопитающих в Цасучейском бору: 1 — суммарная чисΛенность (особей / 100 циΛинΑро-суток); Αоминирующие виΑы: 2 — забайкаΛьский хомячок, 3 — бурозубка тунΑряная, 4 — бурозубка крошечная, 5 — поΛёвка монгоΛьская, 6 — поΛёвка РаΑΑе, 7 — красная поΛёвка; A — остепнённый сосняк, B — первичная гарь, С — старая гарь, D — повторная гарь; стреΛка указывает время прохожΑения пожара. Ось X — гг., ось Y — чисΛенность Fig. 1. Population dynamics of small mammals in the Tsasucheysky Pine Forest: 1 — total abundance (individuals / 100 cylinder-days); dominant species: 2 — Cricetulus pseudogriseus, 3 — Sorex tundrensis, 4 — S. minutissimus, 5 — Alexandromys mongolicus, 6 — Lasiopodomys raddei, 7 — Myodes rutilus; A — steppe pine forest, B — primary burns site, С — old burns site; D — repeated burns site; the arrow indicates the time of the fire. The X-axis shows years; the Y-axis shows population density