Find research datasets worth reusing
Search datasets from major research repositories and use ShareScore to quickly assess how well each record supports discovery, access, and reuse.
4,856
datasets available to search
ShareScore release 0.9.0
Dataset results
4,856 results for “sections”
Aesculus flava (Hippocastanaceae) - fruit - section or open
Image of Aesculus flava (Hippocastanaceae) - fruit - section or open
Aesculus flava (Hippocastanaceae) - fruit - section or open
Image of Aesculus flava (Hippocastanaceae) - fruit - section or open
Agave vilmoriniana (Agavaceae) - fruit - section or open
Image of Agave vilmoriniana (Agavaceae) - fruit - section or open
Chilopsis linearis (Bignoniaceae) - fruit - section or open
Image of Chilopsis linearis (Bignoniaceae) - fruit - section or open
Impatiens pallida (Balsaminaceae) - fruit - section or open
Image of Impatiens pallida (Balsaminaceae) - fruit - section or open
Typha latifolia (Typhaceae) - fruit - section or open
Image of Typha latifolia (Typhaceae) - fruit - section or open
Triodanis perfoliata (Campanulaceae) - fruit - section or open
Image of Triodanis perfoliata (Campanulaceae) - fruit - section or open
Populus deltoides (Salicaceae) - fruit - section or open
Image of Populus deltoides (Salicaceae) - fruit - section or open
Fagus grandifolia (Fagaceae) - fruit - section or open
Image of Fagus grandifolia (Fagaceae) - fruit - section or open
Platanus occidentalis (Platanaceae) - fruit - section or open
Image of Platanus occidentalis (Platanaceae) - fruit - section or open
РИС. 2. ГлаЗ Monachoides incarnata. A. ФотографиЯ препарата иЗолированного глаЗа. B. ФотографиЯ продольного полутонкого среЗа глаЗа. СокраЩениЯ: c – роговица; ec – глаЗнаЯ капсула; r – сетчатка; p – краЯ Зрачка; l – хрусталик, окруженный слоем стекловидного тела. FIG. 2. The eye of Monachoides incarnata. A. Photograph of the preparation of the isolated eye. B. Photograph of the longitudinal semithin section of the eye. Abbreviation: c – cornea; ec – eye capsule; r – retina; p – edges of the pupil; l – lens, surrounded by a layer of the vitreous body. in Зрачок камерных глаЗ наЗемных брюхоногих моллюсков (Heterobranchia, Stylommatophora)
РИС. 2. ГлаЗ Monachoides incarnata. A. ФотографиЯ препарата иЗолированного глаЗа. B. ФотографиЯ продольного полутонкого среЗа глаЗа. СокраЩениЯ: c – роговица; ec – глаЗнаЯ капсула; r – сетчатка; p – краЯ Зрачка; l – хрусталик, окруженный слоем стекловидного тела. FIG. 2. The eye of Monachoides incarnata. A. Photograph of the preparation of the isolated eye. B. Photograph of the longitudinal semithin section of the eye. Abbreviation: c – cornea; ec – eye capsule; r – retina; p – edges of the pupil; l – lens, surrounded by a layer of the vitreous body.
Рис. 2. Продольный (А–Д) и поперечный (Е–З) среЗы череЗ наружный покров ноги моллюска с раЗными типами складок: А, Б – Широкие складки в виде плато, В, Г – длинные иЗвилистые складки, Д, Е – складки с округлыми и бокаловидными клетками в субЭпителиальном слое, Ж, З – слабовыраженные складки с больШими полостЯми (синусами) длЯ гемолимфы под субЭпителиальным слоем. МасШтабные линейки 200 мкм (А, В, Ж, З) и 100 мкм (Б, Г–Е). вК – клетки с вакуолЯми, сэ – субЭпителиальный слой, БК – бокаловиднаЯ клетка, сг – синусы длЯ гемолимфы, ф – фолликулы, а – ацинусы. Fig. 2. Saggital (А–Д) and transverse (Е–З) sections of pedal integument with different types of plicae: А, Б – broad plateau-shaped plicae, В, Г – long, tortuous plicae, Д, Е – plicae with round and goblet cells in the subepithelial layer, Ж, З – mild plicae with large cavities (sinuses) for hemolymph under subepithelial layer. Scale bars 200 µm (А, В, Ж, З) and 100 µm (Б, Г–Е). вК – cells with vacuoles, сэ – subepithelial layer, БК – goblet cell, сг – sinuses for hemolymph, ф – follicles, а – acini. in Nodularia vladivostokensis (Bivalvia: Unionidae) from Razdolnaya River (Primorye, Russia)
Рис. 2. Продольный (А–Д) и поперечный (Е–З) среЗы череЗ наружный покров ноги моллюска с раЗными типами складок: А, Б – Широкие складки в виде плато, В, Г – длинные иЗвилистые складки, Д, Е – складки с округлыми и бокаловидными клетками в субЭпителиальном слое, Ж, З – слабовыраженные складки с больШими полостЯми (синусами) длЯ гемолимфы под субЭпителиальным слоем. МасШтабные линейки 200 мкм (А, В, Ж, З) и 100 мкм (Б, Г–Е). вК – клетки с вакуолЯми, сэ – субЭпителиальный слой, БК – бокаловиднаЯ клетка, сг – синусы длЯ гемолимфы, ф – фолликулы, а – ацинусы. Fig. 2. Saggital (А–Д) and transverse (Е–З) sections of pedal integument with different types of plicae: А, Б – broad plateau-shaped plicae, В, Г – long, tortuous plicae, Д, Е – plicae with round and goblet cells in the subepithelial layer, Ж, З – mild plicae with large cavities (sinuses) for hemolymph under subepithelial layer. Scale bars 200 µm (А, В, Ж, З) and 100 µm (Б, Г–Е). вК – cells with vacuoles, сэ – subepithelial layer, БК – goblet cell, сг – sinuses for hemolymph, ф – follicles, а – acini.
Рис. 6. Поперечные (А–Е, З, И) и продольный (Ж) среЗы череЗ органы пиЩеварительной системы моллюска: А – меШок кристаллического стебелька, Б, В – петли киШки, Г, Д – часть желудка с длинными складками на дорсальной части стенки, Е, З – петли киШки с тифлоЗолем, И – боковаЯ часть тифлоЗолЯ. МасШтабные линейки 300 мкм (Е, З, И), 200 мкм (А, В, Г, Д), 40 мкм (Б). мс – меШок кристаллического стебелька, Кс – кристаллический стебелек, Р – реснички, т – тифлоЗоль, lp – lamina propria, г – гемолимфа. Fig. 6. Transverse (А–Е, З, И) and saggital (Ж) sections of the digestive organs: А – crystalline style sac, Б, В – intestinal limbs, Г, Д – part of the stomach with long plicae on the dorsal wall, Е, З – intestinal limbs with typhlosole, И – lateral part of the typhlosole. Scale bars 300 µm (Е, З, И), 200 µm (А, В, Г, Д), 40 µm (B). мс – style sac, Кс – crystalline style, Р – cilia, т – typhlosole, lp – lamina propria, г – hemolymph. in Nodularia vladivostokensis (Bivalvia: Unionidae) from Razdolnaya River (Primorye, Russia)
Рис. 6. Поперечные (А–Е, З, И) и продольный (Ж) среЗы череЗ органы пиЩеварительной системы моллюска: А – меШок кристаллического стебелька, Б, В – петли киШки, Г, Д – часть желудка с длинными складками на дорсальной части стенки, Е, З – петли киШки с тифлоЗолем, И – боковаЯ часть тифлоЗолЯ. МасШтабные линейки 300 мкм (Е, З, И), 200 мкм (А, В, Г, Д), 40 мкм (Б). мс – меШок кристаллического стебелька, Кс – кристаллический стебелек, Р – реснички, т – тифлоЗоль, lp – lamina propria, г – гемолимфа. Fig. 6. Transverse (А–Е, З, И) and saggital (Ж) sections of the digestive organs: А – crystalline style sac, Б, В – intestinal limbs, Г, Д – part of the stomach with long plicae on the dorsal wall, Е, З – intestinal limbs with typhlosole, И – lateral part of the typhlosole. Scale bars 300 µm (Е, З, И), 200 µm (А, В, Г, Д), 40 µm (B). мс – style sac, Кс – crystalline style, Р – cilia, т – typhlosole, lp – lamina propria, г – hemolymph.
Рис. 8. СреЗы череЗ гонады моллюска: А – поперечный среЗ череЗ гонаду самки, Б–Д – фолликулы в гонадах самок (Б, В – Зрелые ооциты круглой формы, готовые к вымету; Г – ооциты в период активного гаметогенеЗа на стадии раннего трофоплаЗматического роста, Д – ооциты каплевидной формы в период преднерестовой стадии при ЗаверШении трофоплаЗматического роста), Е, Ж – поперечные среЗы череЗ гонаду самца, З, И – ацинусы в гонадах самцов (З – преднерестоваЯ стадиЯ, просветы в ацинусах практически отсутствуют, стенки ацинусов не раЗличимы, И – нерестоваЯ стадиЯ, имеютсЯ просветы в ацинусах). МасШтабные линейки 300 мкм (А), 200 мкм (Е), 100 мкм (Ж), 50 мкм (Б–Д, З, И). вя – вакуолиЗированное Ядро, сф – стенка фолликула, вм – вителлиноваЯ мембрана, РО – раЗвиваюЩиесЯ иЗ пелликулы ооциты, пг – ресничный проток гонады, с – сперматоциты, па – просветы в ацинусах. Fig. 8. Sections through the gonads of the mollusk: А – transverse section through the female gonad, Б–Д – ovarian acini, follicles (Б, В – mature round-shaped oocytes ready to be swept out; Г – oocytes in the period of active gametogenesis at the stage of early trophoplasmatic growth, Д – tear-shaped oocytes during the pre-spawning stage at the end of trophoplasmatic growth), Е, Ж – transverse sections through the male gonads, З, И – testicular acini (З – pre-spawning stage, with practically absent gaps in the acini and invisible the acini walls, И – spawning stage, with gaps in the acini). Scale bars 300 µm (A), 200 µm (E), 100 µm (Ж), 50 µm (Б–Д, З, И). вя – vacuolated nucleus, сф – follicle wall, вм – vitelline membrane, РО – developing oocytes arising from a pellicle, пг – ciliated gonadal duct, с – spermatocytes, па – gaps in acini. in Nodularia vladivostokensis (Bivalvia: Unionidae) from Razdolnaya River (Primorye, Russia)
Рис. 8. СреЗы череЗ гонады моллюска: А – поперечный среЗ череЗ гонаду самки, Б–Д – фолликулы в гонадах самок (Б, В – Зрелые ооциты круглой формы, готовые к вымету; Г – ооциты в период активного гаметогенеЗа на стадии раннего трофоплаЗматического роста, Д – ооциты каплевидной формы в период преднерестовой стадии при ЗаверШении трофоплаЗматического роста), Е, Ж – поперечные среЗы череЗ гонаду самца, З, И – ацинусы в гонадах самцов (З – преднерестоваЯ стадиЯ, просветы в ацинусах практически отсутствуют, стенки ацинусов не раЗличимы, И – нерестоваЯ стадиЯ, имеютсЯ просветы в ацинусах). МасШтабные линейки 300 мкм (А), 200 мкм (Е), 100 мкм (Ж), 50 мкм (Б–Д, З, И). вя – вакуолиЗированное Ядро, сф – стенка фолликула, вм – вителлиноваЯ мембрана, РО – раЗвиваюЩиесЯ иЗ пелликулы ооциты, пг – ресничный проток гонады, с – сперматоциты, па – просветы в ацинусах. Fig. 8. Sections through the gonads of the mollusk: А – transverse section through the female gonad, Б–Д – ovarian acini, follicles (Б, В – mature round-shaped oocytes ready to be swept out; Г – oocytes in the period of active gametogenesis at the stage of early trophoplasmatic growth, Д – tear-shaped oocytes during the pre-spawning stage at the end of trophoplasmatic growth), Е, Ж – transverse sections through the male gonads, З, И – testicular acini (З – pre-spawning stage, with practically absent gaps in the acini and invisible the acini walls, И – spawning stage, with gaps in the acini). Scale bars 300 µm (A), 200 µm (E), 100 µm (Ж), 50 µm (Б–Д, З, И). вя – vacuolated nucleus, сф – follicle wall, вм – vitelline membrane, РО – developing oocytes arising from a pellicle, пг – ciliated gonadal duct, с – spermatocytes, па – gaps in acini.
Data for "Impact of early cleft lip and palate surgery on maxillary growth in 5- and 10-Year-old patients with unilateral cleft lip and palate: a cross-sectional study"
<p>Relative frequency in % (absolute frequency is shown above each bar). Frequency of 5YO indices in cleft patients and frequency of GOSLON indices in cleft patients.</p>
Calcite U-Pb geochronology and paleomagnetism reveal Mesozoic multi-episodic remagnetizations from the Penglaitan GSSP section, South China
<p>The Supplementary S1 includes: Supplemental Figure S1-4 and Tables S1.</p> <p>The Supplementary S2 is the raw data of in-situ calcite U-Pb dating.</p>
FIG. 5. — Serial cross sections from below upwards through a in Comparative floral anatomy of some species of Brassicaceae and its taxonomic significance
FIG. 5. — Serial cross sections from below upwards through a floral bud of Matthiola incana (L.) R.Br. showing: A, pedicel vasculature; continuous siphonostele; B-F, calyx vasculature; two sepal median bundles emerge directly from central stele and two from sepal-median-nectarial complexes; D-G, corolla vasculature; from petal-sepal marginal complexs; D-H, androecium vasculature; six staminal bundles to six fertile stamens emerge directly from the central stele; I-L, gynoecium vasculature, eight vascular masses; two dorsal carpellary bundles, two ventral carpellary masses, four lateral carpellary bundles. Scale bar: 500 μm.
FIG. 3. — Serial cross sections from below upwards through a in Comparative floral anatomy of some species of Brassicaceae and its taxonomic significance
FIG. 3. — Serial cross sections from below upwards through a floral bud of Coronopus didymus (L.) Sm. showing: A, pedicel vasculature; dissected siphonostele; B-D, calyx vasculature; four sepal median bundles arise directly from the central stele as distinct sepal median traces without ramification; C-E, corolla vasculature; four petal vascular bundles protrude from petal-nectarial complexes; C-G, androecium vasculature; two staminal vascular bundles to two fertile stamens emerge directly from the central stele; F-K, gynoecium vasculature; six vascular masses, two dorsal carpellary bundles, two ventral carpellary masses, two septal bundles. Scale bar: 60 μm.
FIG. 1. — Serial cross sections from below upwards through a in Comparative floral anatomy of some species of Brassicaceae and its taxonomic significance
FIG. 1. — Serial cross sections from below upwards through a floral bud of Brassica nigra (L.) W.D.J.Koch showing: A, pedicel vasculature; continuous siphonostele; B-F, Calyx vasculature; two sepal median bundles emerge directly from central stele and two from sepal-median-nectarial complexes; D-F, corolla vasculature; from petal-sepal marginal-nectarial complexes; D-G, androecium vasculature; the two outer stamens receive the vascular supply from two staminal-nectarial complexes while the four inner receive directly from the central stele; I-M, gynoecium vasculature; ten vascular masses; two dorsal carpellary bundles, two ventral carpellary masses, four lateral carpellary bundles and two septal bundles. Scale bar: 200 μm.
FIG. 2. — Serial cross sections from below upwards through a in Comparative floral anatomy of some species of Brassicaceae and its taxonomic significance
FIG. 2. — Serial cross sections from below upwards through a floral bud of Raphanus sativus L. showing: A, pedicel vasculature; dissected siphonostele; B-F, calyx vasculature; four sepal median bundles arise directly from the central stele as distinct sepal median traces, two antero-posterior ramified and two laterals unramified; C-E, corolla vasculature; from petal-sepal marginal complexes; D-I, androecium vasculature; six staminal bundles to six fertile stamens emerge directly from the central stele; J-N, gynoecium vasculature; ten vascular masses; two dorsal carpellary bundles, two ventral carpellary masses, four lateral carpellary bundles and two septal bundles. Scale bar: 500 μm.
ScienceDex guides
Understand access before you commit
These curated guides explain access requirements, typical timelines, costs, and reuse considerations for widely used research datasets.
Allen Brain Atlas
Allen Brain Atlas is an Allen Institute collection of brain map atlases, datasets, APIs, and analysis tools covering mouse, human, and non-human primate brain resources.
Annotated Behaviour and Observability Dataset (ABODe)
ABODe is a University of Edinburgh DataShare dataset for behavior classification in group-housed mice using home-cage video, identities, bounding boxes, ground-plate positions, and annotator labels.
DANDI Archive for NWB datasets
DANDI is a BRAIN Initiative archive for publishing and sharing neurophysiology data, including electrophysiology, optophysiology, and behavioral data packaged as NWB and related standards.
International Brain Laboratory public data
The International Brain Laboratory public data releases expose standardized mouse decision-making experiments, including Neuropixels recordings, widefield calcium imaging, behavior, and session metadata accessed through the ONE API.
OpenNeuro
OpenNeuro is a free, open platform for sharing neuroimaging datasets, with public search, dataset pages, and download paths for web, S3, DataLad, and the OpenNeuro CLI.