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Figg. 95-110 in Biodiversità delle Aleocharinae della Cina: Il Genere Oxypoda (Coleoptera, Staphylinidae)
Figg. 95-110: Spermateca e edeago in visione laterale e ventrale. 95. Oxypoda gonggaensis Pace, 1999; 96-97. Oxypoda (Sphenoma) sinotibetana n. sp.; 98-99. Oxypoda (Sphenoma) erlangmontis n. sp.; 100-101. Oxypoda (Sphenoma) sinoangulata n. sp.; 102-104. Oxypoda (Sphenoma) muyupingensis n. sp.; 105-106. Oxypoda (Sphenoma) taipingensis n. sp.; 107-108. Oxypoda (Sphenoma) microgranulifera n. sp.; 109-110. Oxypoda (Sphenoma) shimianensis n. sp. Scale 0,1 mm.
Figg. 80-94 in Biodiversità delle Aleocharinae della Cina: Il Genere Oxypoda (Coleoptera, Staphylinidae)
Figg. 80-94: Habitus, spermateca e edeago in visione laterale e ventrale. 80-81. Oxypoda (Podoxya) cavazzutii n. sp.; 82-83. Oxypoda (Podoxya) zhagaensis n. sp.; 84. Oxypoda (Podoxya) sinoperexilis n. sp.; 85. Oxypoda (Podoxya) confundibilis n. sp.; 86-87. Oxypoda (Podoxya) dabicola n. sp.; 88-89. Oxypoda (Podoxya) shalulimontis n. sp.; 90-91. Oxypoda (Podoxya) bacillum n. sp.; 92-94. Oxypoda (Podoxya) bimicrospinosa n. sp. Scale 0,1 mm.
Figg. 65-79 in Biodiversità delle Aleocharinae della Cina: Il Genere Oxypoda (Coleoptera, Staphylinidae)
Figg. 65-79: Edeago in visione laterale e ventrale, habitus e spermateca. 65-66. Oxypoda (Podoxya) tibetana n. sp.; 67-68. Oxypoda (Podoxya) sinofortis n. sp.; 69-70. Oxypoda (Podoxya) qionglaimontis n. sp.; 71-72. Oxypoda (Podoxya) daxuemontis n. sp.; 73-74. Oxypoda (Podoxya) dilatatiapex n. sp.; 75-77. Oxypoda (Podoxya) tridentis n. sp.; 78-79. Oxypoda (Podoxya) jiudingensis n. sp. Scale 0,1 mm.
Figg. 13-24 in Biodiversità delle Aleocharinae della Cina: Il Genere Oxypoda (Coleoptera, Staphylinidae)
Figg. 13-24: Habitus. 13. Oxypoda (Podoxya) dabicola n. sp., scala 2,6 mm; 14. Oxypoda (Podoxya) shalulimontis n. sp., scala 3,3 mm; 15. Oxypoda (Podoxya) bacillum n. sp., scala 3,4 mm; 16. Oxypoda (Podoxya) bimicrospinosa n. sp., scala 2,6 mm; 17. Oxypoda (Sphenoma) sinotibetana n. sp., scala 2,5 mm; 18. Oxypoda (Sphenoma) erlangmontis n. sp., scala 3 mm; 19. Oxypoda (Sphenoma) sinoangulata n. sp., scala 2,5 mm; 20. Oxypoda (Sphenoma) muyupingensis n. sp., scala 2,3 mm; 21. Oxypoda (Sphenoma) taipingensis n. sp., scala 2,7 mm; 22. Oxypoda (Sphenoma) microgranulifera n. sp., scala 2,8 mm; 23. Oxypoda (Sphenoma) shimianensis n. sp., scala 2,3 mm; 24. Oxypoda (Sphenoma) nanwutaiensis n. sp., scala 2,5 mm.
Figg. 53-64 in Biodiversità delle Aleocharinae della Cina: Il Genere Oxypoda (Coleoptera, Staphylinidae)
Figg. 53-64: Spermateca, edeago in visione laterale e ventrale e habitus. 53. Oxypoda (Podoxya) guanxianensis n. sp.; 54. Oxypoda (Podoxya) mimobisinuata n. sp.; 55-57. Oxypoda (Podoxya) implorans n. sp.; 58-60. Oxypoda (Podoxya) hastata n. sp.; 61-64. Oxypoda (Podoxya) hailuogouensis n. sp. Scale 0,1 mm.
Figg. 1-12 in Biodiversità delle Aleocharinae della Cina: Il Genere Oxypoda (Coleoptera, Staphylinidae)
Figg. 1-12: Habitus. 1. Oxypoda (Podoxya) meandrifera n. sp., scala 3,5 mm; 2. Oxypoda (Podoxya) guanxianensis n. sp., scala 3,6 mm; 3. Oxypoda (Podoxya) mimobisinuata n. sp., scala 3 mm; 4. Oxypoda (Podoxya) implorans n. sp., scala 3,4 mm; 5. Oxypoda (Podoxya) hastata n. sp., scala 3 mm; 6. Oxypoda (Podoxya) tibetana n. sp., scala 3,9 mm; 7. Oxypoda (Podoxya) sinofortis n. sp., scala 3,2 mm; 8. Oxypoda (Podoxya) qionglaimontis n. sp., scala 3 mm; 9. Oxypoda (Podoxya) daxuemontis n. sp., scala 3 mm; 10. Oxypoda (Podoxya) dilatatiapex n. sp., scala 3,2 mm; 11. Oxypoda (Podoxya) sinoperexilis n. sp., scala 2,2 mm; 12. Oxypoda (Podoxya) confundibilis n. sp., scala 2,7 mm.
Figg. 38-52 in Biodiversità delle Aleocharinae della Cina: Il Genere Oxypoda (Coleoptera, Staphylinidae)
Figg. 38-52: Habitus, edeago in visione laterale e ventrale e spermateca. 38-41. Oxypoda (Oxypoda) mediogranulosa n. sp.; 42-46. Oxypoda (Oxypoda) irrepta n. sp. (42. ♀, 44. ♂); 47-49. Oxypoda (Oxypoda) sinopusilla n. sp.; 50-52. Oxypoda (Podoxya) meandrifera n. sp. Scale 0,1 mm.
Figg. 25-37 in Biodiversità delle Aleocharinae della Cina: Il Genere Oxypoda (Coleoptera, Staphylinidae)
Figg. 25-37: Habitus, edeago in visione laterale e ventrale e spermateca. 25. Oxypoda (Sphenoma) erlangensis n. sp., scala 2,8 mm; 26. Oxypoda (Sphenoma) dabamontis n. sp., scala 2,5 mm; 27. Oxypoda (Sphenoma) liao n. sp., scala 3,1 mm; 28. Oxypoda (Sphenoma) rhododendricola n. sp., scala 3,9 mm; 29. Oxypoda (Bessopora) daxuana n. sp., scala 3,7 mm; 30. Oxypoda (Bessopora) xichangensis n. sp., scala 2,4 mm; 31. Oxypoda (Bessopora) latesentiens n. sp., scala 2,4 mm; 32. Oxypoda (Bessopora) taibaimontis n. sp., scala 3 mm; 33. Oxypoda (Bessopora) microlutea n. sp., scala 2,5 mm; 34-37. Oxypoda (Oxypoda) yunnanicola n. sp. Altre scale 0,1 mm.
Benchmark SIFET 2022 - Dataset 1: Il Chiostro dei Tolentini
<p>Il primo test field è rappresentato dal portico del Chiostro del complesso dei Tolentini, sede dell'Università IUAV di Venezia. La presenza di elementi come gli archi e le volte a crociera definisce il portico come un oggetto architettonico chiuso, di cui ogni parte è potenzialmente oggetto di rilievo, sia le pareti che la copertura.</p> <p>Il caso studio si presta a testare la possibilità di utilizzo di una metodologia operativa che consente una notevole riduzione dei tempi di acquisizione. Nel caso della fotogrammetria con camere sferiche è sufficiente una sola strisciata per acquisire tutte le informazioni necessarie alla generazione del modello fotogrammetrico del porticato; per avere le stesse informazioni utilizzando la fotogrammetria tradizionale si sarebbe invece reso necessario effettuare un numero molto maggiore di strisciate.</p> <p>Durante questo test le camere sferiche sono state orientate mantenendo l'asse ottico ortogonale alla parete in mattoni e al porticato: é stata effettuata una presa per ogni campata dei quattro lati mentre per le campate angolari sono state acquisite due immagini, in posizioni differenti, l'una ruotata di 90° rispetto all'altra. Con ogni camera sono state quindi acquisite 36 immagini.</p>
Benchmark SIFET 2022 - Dataset 3: Il Rio de S. Barnaba
<p>Il terzo test field individuato è stato il Rio de San Barnaba. Il Rio si caratterizza per avere lunghi tratti in cui gli edifici affacciano direttamente su un canale di larghezza variabile tra i 5 m e i 10 m. Anche in questo caso la disposizione degli edifici fa sì che si l'area assuma la configurazione di un corridoio urbano, la cui caratteristica fondamentale è la possibilità di essere percorso esclusivamente utilizzando una barca.</p> <p>Valutare la possibilità di utilizzo delle camere sferiche per il rilievo dei rii veneziani è un tema di reale interesse poiché la configurazione spaziale di tali luoghi non permette l'utilizzo delle tradizionali tecniche di rilievo: la fotogrammetria tradizionale risulta essere di difficile applicazione in questo contesto, e il rilievo laser scanning diventa una tecnica inutilizzabile non disponendo di una base stabile di appoggio. </p> <p>Durante questo test le camere sferiche sono state orientate mantenendo gli assi ottici ortogonali alle facciate degli edifici per il Set 1 e ruotandole di 90°, ovvero paralleli alle facciate degli edifici, per il Set 2. Per il Set 1 sono state acquisite 109 immagini (62 dell'area riportata nella sezione "Schema delle prese" e 47 delle zone immediatamente vicine, di completamento) con la camera Nikon KeyMission 360 e 110 immagini (63 dell'area riportata nella sezione "Schema delle prese" e 47 delle zone immediatamente vicine, di completamento) con le camere GoPro MAX 360 e Ricoh Theta Z1; per il Set 2 sono state acquisite 57 immagini con la camera Nikon KeyMission 360 e 56 immagini con le camere GoPro MAX 360 e Ricoh Theta Z1.</p>
Voyage en cluster : qu'en est-il de sa promesse relationnelle ?
<p>Dataset, R script et guides d'entretien mobilisés pour l'article d'Estelle Vallier, 2018, <a href="https://arcs.episciences.org/9235">Voyage en cluster : qu'en est-il de sa promesse relationnelle ?</a>, 2018, ARCS.</p>
PROCRAFT_Form A_Ilyushin Il-2m3_Kbely
<p>Information on a Ilyushin Il-2m3 Sturmovik aircraft (Soviet Union) from 1942 found in Prague-Kbely airport</p>
Understory and canopy phenology, I/Io, solar radiation, and temperature related to Trelease Woods, Urbana, IL, USA from 1995–2022
<p>This study used phenological field observations made year-round for 15 dominant canopy tree species (1995-2022), understory saplings of three species (1995-2022), and 33 herb species (1995-2017) in Trelease Woods, a mature old-growth deciduous forest remnant near Urbana, Illinois, USA. The phenological data sets are paired with basal-area data, mid-day light transmission data from 21 days in 2002, daily solar radiation data from a NOAA (SURFRAD) site at Bondville, Illinois, and daily temperature data from a nearby weather station in Champaign, Illinois. These datasets were used to parameterize models of canopy light transmittance and understory plant light interception.</p> <p>These data sets were used to test the mismatch hypothesis, viz, whether canopy trees or understory plants are more sensitive to climate change, thus changing through time the relative amount of transmitted light understory species intercept. We estimated how four factors (understory phenology, cold temperatures, canopy phenology, and sunlight) individually limit the potential light interception of each understory species.</p>
Fig. 2 in Prima segnalazione di Petromyzon marinus Linnaeus 1758 (Agnatha, Petromyzontiformes, Petromyzontidae) per il fiume Mignone (Alto Lazio)
Fig. 2 - Fermi-immagine tratti dal filmato del primo individuo di lampreda di mare rilevato nel Fiume Mignone. / Freeze-frames from the video of the first individual of sea lamprey observed in the Mignone River (Foto/photo: A. Olini, May/maggio 2020).
Fig. 1 in Prima segnalazione di Petromyzon marinus Linnaeus 1758 (Agnatha, Petromyzontiformes, Petromyzontidae) per il fiume Mignone (Alto Lazio)
Fig. 1 - Localizzazione dell'area di studio e dell'unica località di riproduzione oggi nota in Italia della lampreda di mare (bacino del Magra-Vara, provincia di La Spezia). / Location of the study area and of the only known breeding site in Italy for the Sea lamprey (MagraVara river basin, province of La Spezia).
Fig. 4 in Prima segnalazione di Petromyzon marinus Linnaeus 1758 (Agnatha, Petromyzontiformes, Petromyzontidae) per il fiume Mignone (Alto Lazio)
Fig. 4 - La località di segnalazione di lampreda di mare lungo il corso del Fiume Mignone. / The report location of sea lamprey along the course of the River Mignone (Foto/photo: V. Ferri).
Fig. 5 in Prima segnalazione di Petromyzon marinus Linnaeus 1758 (Agnatha, Petromyzontiformes, Petromyzontidae) per il fiume Mignone (Alto Lazio)
Fig. 5 - Lo sbarramento delle Mole, a monte del punto di segnalazione di lampreda di mare nel Fiume Mignone: situazione autunnale. / The dam Le Mole, upstream of the sea lamprey report point in the Mignone River: autumn situation. (Foto/photo: V. Ferri, 28 November/novembre 2020).
Fig. 3 in Prima segnalazione di Petromyzon marinus Linnaeus 1758 (Agnatha, Petromyzontiformes, Petromyzontidae) per il fiume Mignone (Alto Lazio)
Fig. 3 - Fermo-immagine del filmato (in alto) e fotografia (in basso) del secondo individuo di lampreda di mare rilevato nel Fiume Mignone. / A freeze-frame (top) and a photograph (bottom) of the second individual of sea lamprey detected in the Mignone River (Foto/photo: A. Olini, May/maggio 2020).
Figure 2. Serum IL-1 in Physical characterization and wound healing properties of Zamzam water
Figure 2. Serum IL-1β level of treatment groups. *Significantly lesser at p <0.05 on comparing with Group 2; **Highly significant lesser at p <0.01 on comparing with group 2; ns: nonsignificant when compared to Group 3. Group 1: Normal control; Group 2: Disease control (wound without treatment); Group 3: Standard control (treatment with povidone-iodine cream); Group 4: Zamzam water treatment group.
Figure 3. Serum IL-6 in Physical characterization and wound healing properties of Zamzam water
Figure 3. Serum IL-6 level of treatment groups. ***Extremely high significant at p <0.001; **Extremely significant at p <0.01 on comparing with Group 2; ns: nonsignificant when compared to Group 3. Group 1: Normal control; Group 2: Disease control (wound without treatment); Group 3: Standard control (treatment with povidone iodine cream); Group 4: Zamzam water treatment group.
ScienceDex guides
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Allen Brain Atlas
Allen Brain Atlas is an Allen Institute collection of brain map atlases, datasets, APIs, and analysis tools covering mouse, human, and non-human primate brain resources.
Annotated Behaviour and Observability Dataset (ABODe)
ABODe is a University of Edinburgh DataShare dataset for behavior classification in group-housed mice using home-cage video, identities, bounding boxes, ground-plate positions, and annotator labels.
DANDI Archive for NWB datasets
DANDI is a BRAIN Initiative archive for publishing and sharing neurophysiology data, including electrophysiology, optophysiology, and behavioral data packaged as NWB and related standards.
International Brain Laboratory public data
The International Brain Laboratory public data releases expose standardized mouse decision-making experiments, including Neuropixels recordings, widefield calcium imaging, behavior, and session metadata accessed through the ONE API.
OpenNeuro
OpenNeuro is a free, open platform for sharing neuroimaging datasets, with public search, dataset pages, and download paths for web, S3, DataLad, and the OpenNeuro CLI.