Find research datasets worth reusing

РИС. 4. Прикрепительный аппарат глохидиев Beringiana beringiana: A–C – внешний вид крючков; D – макрошипы. Масштабные линейки 10 мкм (A–C) и 5 мкм (D). СканируюЩаЯ ЭлектроннаЯ микроскопиЯ. FIG. 4. Hooks (A–C) and macrospines (D) of Beringiana beringiana glochidia. Scale bars 10 µm (A–C) и 5 µm (D). Scanning electron microscopy. in Первые данные о морфологии глохидиев двустворчатых моллюсков Beringiana beringiana (Bivalvia, Unionidae) оЗера Дальнее, Камчатка

РИС. 4. Прикрепительный аппарат глохидиев Beringiana beringiana: A–C – внешний вид крючков; D – макрошипы. Масштабные линейки 10 мкм (A–C) и 5 мкм (D). СканируюЩаЯ ЭлектроннаЯ микроскопиЯ. FIG. 4. Hooks (A–C) and macrospines (D) of Beringiana beringiana glochidia. Scale bars 10 µm (A–C) и 5 µm (D). Scanning electron microscopy.

РИС. 5. Поверхности створки глохидиЯ со скульптурой и порами: А – наруЖнаЯ; В –внутреннЯЯ. Масштабные линейки 10 мкм. СканируюЩаЯ ЭлектроннаЯ микроскопиЯ. FIG. 5. Valve surfaces with the sculpture and pores: A – exterior; B – interior. Scale bars 10 µm. Scanning electron microscopy. in Первые данные о морфологии глохидиев двустворчатых моллюсков Beringiana beringiana (Bivalvia, Unionidae) оЗера Дальнее, Камчатка

РИС. 5. Поверхности створки глохидиЯ со скульптурой и порами: А – наруЖнаЯ; В –внутреннЯЯ. Масштабные линейки 10 мкм. СканируюЩаЯ ЭлектроннаЯ микроскопиЯ. FIG. 5. Valve surfaces with the sculpture and pores: A – exterior; B – interior. Scale bars 10 µm. Scanning electron microscopy.

РИС. 2. Раковины 4-х ЭкЗемплЯров Beringiana beringiana со Зрелыми глохидиЯми. МасштабнаЯ линейка 3 см. FIG. 2. Shells of four Beringiana beringiana specimens found with mature glochidia. Scale bar 3 cm. in Первые данные о морфологии глохидиев двустворчатых моллюсков Beringiana beringiana (Bivalvia, Unionidae) оЗера Дальнее, Камчатка

РИС. 2. Раковины 4-х ЭкЗемплЯров Beringiana beringiana со Зрелыми глохидиЯми. МасштабнаЯ линейка 3 см. FIG. 2. Shells of four Beringiana beringiana specimens found with mature glochidia. Scale bar 3 cm.

РИС. 3. Раковины Зрелых глохидиев Beringiana beringiana в раЗных ракурсах: А–С – Закрытые раковины, вид со стороны створки (А), вентрального угла (В) и лигамента (С); D–F – полностью открытые раковины, вид иЗнутри (D), снаруЖи (E) и боковых краев створок (F); G, H – приоткрытые раковины, стрелка укаЗывает на остатки волокон мускулаЗамыкателЯ. МасштабнаЯ линейка 100 мкм. СканируюЩаЯ ЭлектроннаЯ микроскопиЯ. FIG. 3. Mature glochidial shells of Beringiana beringiana from different angles of view: A–C – closed shells, view from the valve side (A), ventral angle (B), and ligament (C); D–F – open shells, interior view (D), exterior view (E), and from lateral margins of valves (F); G, H – ajar shells, the arrows indicate the remains of the adductor muscle fibers. Scale bar 100 µm. Scanning electron microscopy. in Первые данные о морфологии глохидиев двустворчатых моллюсков Beringiana beringiana (Bivalvia, Unionidae) оЗера Дальнее, Камчатка

РИС. 3. Раковины Зрелых глохидиев Beringiana beringiana в раЗных ракурсах: А–С – Закрытые раковины, вид со стороны створки (А), вентрального угла (В) и лигамента (С); D–F – полностью открытые раковины, вид иЗнутри (D), снаруЖи (E) и боковых краев створок (F); G, H – приоткрытые раковины, стрелка укаЗывает на остатки волокон мускулаЗамыкателЯ. МасштабнаЯ линейка 100 мкм. СканируюЩаЯ ЭлектроннаЯ микроскопиЯ. FIG. 3. Mature glochidial shells of Beringiana beringiana from different angles of view: A–C – closed shells, view from the valve side (A), ventral angle (B), and ligament (C); D–F – open shells, interior view (D), exterior view (E), and from lateral margins of valves (F); G, H – ajar shells, the arrows indicate the remains of the adductor muscle fibers. Scale bar 100 µm. Scanning electron microscopy.

opencc-by-4.0Apr 2023View details →

РИС. 3. Пенисы моллюсков сем. Bithyniidae иЗ водоемов Тюменской области. A. Bithynia tentaculata, B. B. decipiens, C. B. curta, D. B. producta, E. Boreoelona contortrix, F.Opisthorchophorus troscheli, G. O. baudonianus, H. O. abakumovae, I. Boreoelona sibirica, J. Paraelona socialis, K. P. milachevitchi, L. Digyrcidum bourguignati, M. Boreoelona sp., N. Digyrcidum starobogatovi. МасШтабнаЯ линейка 1 мм. Фото: Н.И. Андреев. FIG. 3. The penes of the bithyniid species from Tyumen Region. A. Bithynia tentaculata, B. B. decipiens, C. B. curta, D. B. producta, E. Boreoelona contortrix, F.Opisthorchophorus troscheli, G. O. baudonianus, H. O. abakumovae, I. Boreoelona sibirica, J. Paraelona socialis, K. P. milachevitchi, L. Digyrcidum bourguignati, M. Boreoelona sp., N. Digyrcidum starobogatovi. Scale bars: 1 mm. Photos: N.I. Andreyev. in Моллюски семейства Bithyniidae (Mollusca, Gastropoda) Тюменской области

РИС. 3. Пенисы моллюсков сем. Bithyniidae иЗ водоемов Тюменской области. A. Bithynia tentaculata, B. B. decipiens, C. B. curta, D. B. producta, E. Boreoelona contortrix, F.Opisthorchophorus troscheli, G. O. baudonianus, H. O. abakumovae, I. Boreoelona sibirica, J. Paraelona socialis, K. P. milachevitchi, L. Digyrcidum bourguignati, M. Boreoelona sp., N. Digyrcidum starobogatovi. МасШтабнаЯ линейка 1 мм. Фото: Н.И. Андреев. FIG. 3. The penes of the bithyniid species from Tyumen Region. A. Bithynia tentaculata, B. B. decipiens, C. B. curta, D. B. producta, E. Boreoelona contortrix, F.Opisthorchophorus troscheli, G. O. baudonianus, H. O. abakumovae, I. Boreoelona sibirica, J. Paraelona socialis, K. P. milachevitchi, L. Digyrcidum bourguignati, M. Boreoelona sp., N. Digyrcidum starobogatovi. Scale bars: 1 mm. Photos: N.I. Andreyev.

opencc-by-4.0Apr 2023View details →

РИС. 2. Раковины Opisthorchophorus, Paraelona и Boreoelona иЗ водоемов Тюменской области: A. Opisthorchophorus troscheli иЗ оЗ. Кривое, 30.07.2015. B. O. abacumovae иЗ р. Ирюм, 25.08.2015. C. O. baudonianus иЗ р. Ирюм, 02.07.2015. D. Paraelona socialis иЗ р. Ирюм, 02.07.2015. E. Paraelona milachevitchi иЗ р. Ирюм, 02.07.2015. F. Boreoelona sp. иЗ беЗымЯнного оЗера в пойме р. БольШой Балык, 02.06.2019. G. B. contortrix иЗ беЗымЯнного оЗера в пойме р. БольШой Балык, 02.06.2019. H. B. sibirica иЗ беЗымЯнного оЗера в пойме р. БольШой Балык, 02.06.2019. МасШтаб: 1 мм. Фото Н.И. Андреева. FIG. 2. Shells of Opisthorchophorus, Paraelona and Boreoelona species of the Tyumen Region waterbodies. A. Opisthorchophorus troscheli, Krivoye Lake, 30.07.2015. B. O. abacumovae, Iryum River, 25.08.2015. C. O. baudonianus, Iryum River, 02.07.2015. D. Paraelona socialis иЗ р. Ирюм 02.07.2015. E. Paraelona milachevitchi, Iryum River, 02.07.2015. F. Boreoe - lona sp., an unnamed lake in the Bolshoy Balyk River floodplain 02.06.2019, G. B. contortrix, Iryum River, 15.07.2012. H. B. sibirica, an unnamed lake in the Bolshoy Balyk River floodplain, 02.06.2019. Scale bars: 1 mm. Photos: N.I. Andreyev. in Моллюски семейства Bithyniidae (Mollusca, Gastropoda) Тюменской области

РИС. 2. Раковины Opisthorchophorus, Paraelona и Boreoelona иЗ водоемов Тюменской области: A. Opisthorchophorus troscheli иЗ оЗ. Кривое, 30.07.2015. B. O. abacumovae иЗ р. Ирюм, 25.08.2015. C. O. baudonianus иЗ р. Ирюм, 02.07.2015. D. Paraelona socialis иЗ р. Ирюм, 02.07.2015. E. Paraelona milachevitchi иЗ р. Ирюм, 02.07.2015. F. Boreoelona sp. иЗ беЗымЯнного оЗера в пойме р. БольШой Балык, 02.06.2019. G. B. contortrix иЗ беЗымЯнного оЗера в пойме р. БольШой Балык, 02.06.2019. H. B. sibirica иЗ беЗымЯнного оЗера в пойме р. БольШой Балык, 02.06.2019. МасШтаб: 1 мм. Фото Н.И. Андреева. FIG. 2. Shells of Opisthorchophorus, Paraelona and Boreoelona species of the Tyumen Region waterbodies. A. Opisthorchophorus troscheli, Krivoye Lake, 30.07.2015. B. O. abacumovae, Iryum River, 25.08.2015. C. O. baudonianus, Iryum River, 02.07.2015. D. Paraelona socialis иЗ р. Ирюм 02.07.2015. E. Paraelona milachevitchi, Iryum River, 02.07.2015. F. Boreoe - lona sp., an unnamed lake in the Bolshoy Balyk River floodplain 02.06.2019, G. B. contortrix, Iryum River, 15.07.2012. H. B. sibirica, an unnamed lake in the Bolshoy Balyk River floodplain, 02.06.2019. Scale bars: 1 mm. Photos: N.I. Andreyev.

РИС. 3. ИЗменчивость формы вагины у Monacha cartusiana c Запада Украины. A. ИваноФранковск. B. Брюховичи. C–E. Львов, участок № 3. F–H. Подборцы. Стрелками покаЗано латеральное выпЯчивание вагины. МасШтаб 1 мм. FIG. 3. Variability of the vagina shape in Monacha cartusiana from Western Ukraine. A. Ivano-Frankivsk. B. Briukhovychi. C–E. Lviv, site 3. F–H. Pidbirtsi. The arrows show the lateral bulge of the vagina. Scale bars 1 mm. in Monacha claustralis и M. cartusiana (Gastropoda, Hygromiidae) - два криптических вида антропохорных наЗемных моллюсков на Западе Украины

РИС. 3. ИЗменчивость формы вагины у Monacha cartusiana c Запада Украины. A. ИваноФранковск. B. Брюховичи. C–E. Львов, участок № 3. F–H. Подборцы. Стрелками покаЗано латеральное выпЯчивание вагины. МасШтаб 1 мм. FIG. 3. Variability of the vagina shape in Monacha cartusiana from Western Ukraine. A. Ivano-Frankivsk. B. Briukhovychi. C–E. Lviv, site 3. F–H. Pidbirtsi. The arrows show the lateral bulge of the vagina. Scale bars 1 mm.

РИС. 5. ИЗвестные находки Monacha cartusiana на Западе Украины. A. Анатомически проверенные авторами статьи. B. Определенные только по раковинам или беЗ учета анатомических раЗличий между M. cartusiana и M. claustralis. ИЗЗа масШтаба картосхем находки в блиЗко расположенных населенных пунктах объединены в одну точку. FIG. 5. Known records of Monacha cartusiana in Western Ukraine. A. Anatomically examined by the authors of this paper. B. Identifed only by shell or without regard to anatomical differences between M. cartusiana and M. claustralis. Due to the scale of the schematic maps, the findings in closely located settlements are combined into one point. in Monacha claustralis и M. cartusiana (Gastropoda, Hygromiidae) - два криптических вида антропохорных наЗемных моллюсков на Западе Украины

РИС. 5. ИЗвестные находки Monacha cartusiana на Западе Украины. A. Анатомически проверенные авторами статьи. B. Определенные только по раковинам или беЗ учета анатомических раЗличий между M. cartusiana и M. claustralis. ИЗЗа масШтаба картосхем находки в блиЗко расположенных населенных пунктах объединены в одну точку. FIG. 5. Known records of Monacha cartusiana in Western Ukraine. A. Anatomically examined by the authors of this paper. B. Identifed only by shell or without regard to anatomical differences between M. cartusiana and M. claustralis. Due to the scale of the schematic maps, the findings in closely located settlements are combined into one point.

РИС. 2. Дистальные отделы половой системы особей иЗ смеШанной колонии Monacha claustralis (A–D) и M. cartusiana (E–F). D, F. Вскрытый атриум у двух видов. Условные сокраЩениЯ: at – атриум; atpl – складка внутри атриума; ep – Эпифаллус; fl – бич; mg – слиЗистые желеЗы; pe – пенис; pp – папилла пениса; va – вагина; vap1 – баЗальнаЯ часть вагинального придатка; vap2 – апикальнаЯ часть вагинального придатка; vlb – латеральное выпЯчивание вагины. МасШтаб 1 мм. FIG. 2. Distal parts of the reproductive system of specimens from a mixed colony of Monacha claustralis (A–D) and M. cartusiana (E–F). D, F. Dissected atrium in two species. Abbreviations: at – atrium; atpl – pleat inside the atrium; ep – epiphallus; fl – flagellum; mg – mucus glands; pe – penis; pp – penial papilla; va – vagina; vap1 – basal part of vaginal appendage; vap2 – apical part of vaginal appendage; vlb – lateral bulge of the vagina. Scale bars 1 mm. in Monacha claustralis и M. cartusiana (Gastropoda, Hygromiidae) - два криптических вида антропохорных наЗемных моллюсков на Западе Украины

РИС. 2. Дистальные отделы половой системы особей иЗ смеШанной колонии Monacha claustralis (A–D) и M. cartusiana (E–F). D, F. Вскрытый атриум у двух видов. Условные сокраЩениЯ: at – атриум; atpl – складка внутри атриума; ep – Эпифаллус; fl – бич; mg – слиЗистые желеЗы; pe – пенис; pp – папилла пениса; va – вагина; vap1 – баЗальнаЯ часть вагинального придатка; vap2 – апикальнаЯ часть вагинального придатка; vlb – латеральное выпЯчивание вагины. МасШтаб 1 мм. FIG. 2. Distal parts of the reproductive system of specimens from a mixed colony of Monacha claustralis (A–D) and M. cartusiana (E–F). D, F. Dissected atrium in two species. Abbreviations: at – atrium; atpl – pleat inside the atrium; ep – epiphallus; fl – flagellum; mg – mucus glands; pe – penis; pp – penial papilla; va – vagina; vap1 – basal part of vaginal appendage; vap2 – apical part of vaginal appendage; vlb – lateral bulge of the vagina. Scale bars 1 mm.

РИС. 1. СмеШаннаЯ колониЯ Monacha claustralis и M. cartusiana во Львове. А. Местообитание, основные места сбора улиток отмечены красными крестиками. B. НеполовоЗрелаЯ особь на ветке туи. C. Раковины анатомически определенных M. claustralis. D. То же длЯ M. cartusiana. МасШтаб 5 мм. FIG. 1. Mixed colony of Monacha claustralis and M. cartusiana in Lviv. A. Habitat, the main places of snail collecting marked with red crosses. B. Immature specimen on a thuja branch. C. Shells of anatomically identified M. claustralis. D. The same for M. cartusiana. Scale bar 5 mm. in Monacha claustralis и M. cartusiana (Gastropoda, Hygromiidae) - два криптических вида антропохорных наЗемных моллюсков на Западе Украины

РИС. 1. СмеШаннаЯ колониЯ Monacha claustralis и M. cartusiana во Львове. А. Местообитание, основные места сбора улиток отмечены красными крестиками. B. НеполовоЗрелаЯ особь на ветке туи. C. Раковины анатомически определенных M. claustralis. D. То же длЯ M. cartusiana. МасШтаб 5 мм. FIG. 1. Mixed colony of Monacha claustralis and M. cartusiana in Lviv. A. Habitat, the main places of snail collecting marked with red crosses. B. Immature specimen on a thuja branch. C. Shells of anatomically identified M. claustralis. D. The same for M. cartusiana. Scale bar 5 mm.

FIG. 1. Berryteuthis septemdentatus, neotype. A. dorsal view. B. ventral view. Scale – 10 in Taxonomic status of squids of the genus Berryteuthis Naef, 1921 (Gonatidae, Oegopsida) inhabiting the Sea of Japan

FIG. 1. Berryteuthis septemdentatus, neotype. A. dorsal view. B. ventral view. Scale – 10 cm. РИС. 1. Неотип Berryteuthis septemdentatus. A. вид с дорсальной стороны. B. вид с вентральной стороны. Шкала – 10 см.

Assessing size at sexual maturity and fine-scale population structure in a direct developing whelk (Buccinum undatum) in Southern Newfoundland, Canada

R script file used to filter genotype data, estimate L50, and analyze patterns of population structure of Buccinum undatum in Southern Newfoundland, Canada. Also included are the following files required to run the script: populationsNWA.snps.vcf - Northwest Atlantic group output at the conclusion of the Stacks de novo pipeline pop_map_NWA.txt - Population map for the Northwest Atlantic group genlightNWAFullFilt.rds - Filtered genotype data for the Northwest Atlantic group populations3Ps.snps.vcf - 3Ps group output at the conclusion of the Stacks de novo pipeline  pop_map_3Ps.txt - Population map for the 3Ps group genlight3PsFullFilt.rds - Filtered genotype data for the 3Ps group maturity_data.csv - Data set containing, shell length, sex, and maturity status for samples. sample_site_coordinates_3Ps.csv - Data set containing coordinates of 3Ps sample sites

opencc-by-4.0Dec 2018View details →

Рис. 2. Продольный (А–Д) и поперечный (Е–З) среЗы череЗ наружный покров ноги моллюска с раЗными типами складок: А, Б – Широкие складки в виде плато, В, Г – длинные иЗвилистые складки, Д, Е – складки с округлыми и бокаловидными клетками в субЭпителиальном слое, Ж, З – слабовыраженные складки с больШими полостЯми (синусами) длЯ гемолимфы под субЭпителиальным слоем. МасШтабные линейки 200 мкм (А, В, Ж, З) и 100 мкм (Б, Г–Е). вК – клетки с вакуолЯми, сэ – субЭпителиальный слой, БК – бокаловиднаЯ клетка, сг – синусы длЯ гемолимфы, ф – фолликулы, а – ацинусы. Fig. 2. Saggital (А–Д) and transverse (Е–З) sections of pedal integument with different types of plicae: А, Б – broad plateau-shaped plicae, В, Г – long, tortuous plicae, Д, Е – plicae with round and goblet cells in the subepithelial layer, Ж, З – mild plicae with large cavities (sinuses) for hemolymph under subepithelial layer. Scale bars 200 µm (А, В, Ж, З) and 100 µm (Б, Г–Е). вК – cells with vacuoles, сэ – subepithelial layer, БК – goblet cell, сг – sinuses for hemolymph, ф – follicles, а – acini. in Nodularia vladivostokensis (Bivalvia: Unionidae) from Razdolnaya River (Primorye, Russia)

Рис. 2. Продольный (А–Д) и поперечный (Е–З) среЗы череЗ наружный покров ноги моллюска с раЗными типами складок: А, Б – Широкие складки в виде плато, В, Г – длинные иЗвилистые складки, Д, Е – складки с округлыми и бокаловидными клетками в субЭпителиальном слое, Ж, З – слабовыраженные складки с больШими полостЯми (синусами) длЯ гемолимфы под субЭпителиальным слоем. МасШтабные линейки 200 мкм (А, В, Ж, З) и 100 мкм (Б, Г–Е). вК – клетки с вакуолЯми, сэ – субЭпителиальный слой, БК – бокаловиднаЯ клетка, сг – синусы длЯ гемолимфы, ф – фолликулы, а – ацинусы. Fig. 2. Saggital (А–Д) and transverse (Е–З) sections of pedal integument with different types of plicae: А, Б – broad plateau-shaped plicae, В, Г – long, tortuous plicae, Д, Е – plicae with round and goblet cells in the subepithelial layer, Ж, З – mild plicae with large cavities (sinuses) for hemolymph under subepithelial layer. Scale bars 200 µm (А, В, Ж, З) and 100 µm (Б, Г–Е). вК – cells with vacuoles, сэ – subepithelial layer, БК – goblet cell, сг – sinuses for hemolymph, ф – follicles, а – acini.

opencc-by-4.0Dec 2018View details →

Рис. 6. Поперечные (А–Е, З, И) и продольный (Ж) среЗы череЗ органы пиЩеварительной системы моллюска: А – меШок кристаллического стебелька, Б, В – петли киШки, Г, Д – часть желудка с длинными складками на дорсальной части стенки, Е, З – петли киШки с тифлоЗолем, И – боковаЯ часть тифлоЗолЯ. МасШтабные линейки 300 мкм (Е, З, И), 200 мкм (А, В, Г, Д), 40 мкм (Б). мс – меШок кристаллического стебелька, Кс – кристаллический стебелек, Р – реснички, т – тифлоЗоль, lp – lamina propria, г – гемолимфа. Fig. 6. Transverse (А–Е, З, И) and saggital (Ж) sections of the digestive organs: А – crystalline style sac, Б, В – intestinal limbs, Г, Д – part of the stomach with long plicae on the dorsal wall, Е, З – intestinal limbs with typhlosole, И – lateral part of the typhlosole. Scale bars 300 µm (Е, З, И), 200 µm (А, В, Г, Д), 40 µm (B). мс – style sac, Кс – crystalline style, Р – cilia, т – typhlosole, lp – lamina propria, г – hemolymph. in Nodularia vladivostokensis (Bivalvia: Unionidae) from Razdolnaya River (Primorye, Russia)

Рис. 6. Поперечные (А–Е, З, И) и продольный (Ж) среЗы череЗ органы пиЩеварительной системы моллюска: А – меШок кристаллического стебелька, Б, В – петли киШки, Г, Д – часть желудка с длинными складками на дорсальной части стенки, Е, З – петли киШки с тифлоЗолем, И – боковаЯ часть тифлоЗолЯ. МасШтабные линейки 300 мкм (Е, З, И), 200 мкм (А, В, Г, Д), 40 мкм (Б). мс – меШок кристаллического стебелька, Кс – кристаллический стебелек, Р – реснички, т – тифлоЗоль, lp – lamina propria, г – гемолимфа. Fig. 6. Transverse (А–Е, З, И) and saggital (Ж) sections of the digestive organs: А – crystalline style sac, Б, В – intestinal limbs, Г, Д – part of the stomach with long plicae on the dorsal wall, Е, З – intestinal limbs with typhlosole, И – lateral part of the typhlosole. Scale bars 300 µm (Е, З, И), 200 µm (А, В, Г, Д), 40 µm (B). мс – style sac, Кс – crystalline style, Р – cilia, т – typhlosole, lp – lamina propria, г – hemolymph.

opencc-by-4.0Dec 2018View details →

Рис. 8. СреЗы череЗ гонады моллюска: А – поперечный среЗ череЗ гонаду самки, Б–Д – фолликулы в гонадах самок (Б, В – Зрелые ооциты круглой формы, готовые к вымету; Г – ооциты в период активного гаметогенеЗа на стадии раннего трофоплаЗматического роста, Д – ооциты каплевидной формы в период преднерестовой стадии при ЗаверШении трофоплаЗматического роста), Е, Ж – поперечные среЗы череЗ гонаду самца, З, И – ацинусы в гонадах самцов (З – преднерестоваЯ стадиЯ, просветы в ацинусах практически отсутствуют, стенки ацинусов не раЗличимы, И – нерестоваЯ стадиЯ, имеютсЯ просветы в ацинусах). МасШтабные линейки 300 мкм (А), 200 мкм (Е), 100 мкм (Ж), 50 мкм (Б–Д, З, И). вя – вакуолиЗированное Ядро, сф – стенка фолликула, вм – вителлиноваЯ мембрана, РО – раЗвиваюЩиесЯ иЗ пелликулы ооциты, пг – ресничный проток гонады, с – сперматоциты, па – просветы в ацинусах. Fig. 8. Sections through the gonads of the mollusk: А – transverse section through the female gonad, Б–Д – ovarian acini, follicles (Б, В – mature round-shaped oocytes ready to be swept out; Г – oocytes in the period of active gametogenesis at the stage of early trophoplasmatic growth, Д – tear-shaped oocytes during the pre-spawning stage at the end of trophoplasmatic growth), Е, Ж – transverse sections through the male gonads, З, И – testicular acini (З – pre-spawning stage, with practically absent gaps in the acini and invisible the acini walls, И – spawning stage, with gaps in the acini). Scale bars 300 µm (A), 200 µm (E), 100 µm (Ж), 50 µm (Б–Д, З, И). вя – vacuolated nucleus, сф – follicle wall, вм – vitelline membrane, РО – developing oocytes arising from a pellicle, пг – ciliated gonadal duct, с – spermatocytes, па – gaps in acini. in Nodularia vladivostokensis (Bivalvia: Unionidae) from Razdolnaya River (Primorye, Russia)

Рис. 8. СреЗы череЗ гонады моллюска: А – поперечный среЗ череЗ гонаду самки, Б–Д – фолликулы в гонадах самок (Б, В – Зрелые ооциты круглой формы, готовые к вымету; Г – ооциты в период активного гаметогенеЗа на стадии раннего трофоплаЗматического роста, Д – ооциты каплевидной формы в период преднерестовой стадии при ЗаверШении трофоплаЗматического роста), Е, Ж – поперечные среЗы череЗ гонаду самца, З, И – ацинусы в гонадах самцов (З – преднерестоваЯ стадиЯ, просветы в ацинусах практически отсутствуют, стенки ацинусов не раЗличимы, И – нерестоваЯ стадиЯ, имеютсЯ просветы в ацинусах). МасШтабные линейки 300 мкм (А), 200 мкм (Е), 100 мкм (Ж), 50 мкм (Б–Д, З, И). вя – вакуолиЗированное Ядро, сф – стенка фолликула, вм – вителлиноваЯ мембрана, РО – раЗвиваюЩиесЯ иЗ пелликулы ооциты, пг – ресничный проток гонады, с – сперматоциты, па – просветы в ацинусах. Fig. 8. Sections through the gonads of the mollusk: А – transverse section through the female gonad, Б–Д – ovarian acini, follicles (Б, В – mature round-shaped oocytes ready to be swept out; Г – oocytes in the period of active gametogenesis at the stage of early trophoplasmatic growth, Д – tear-shaped oocytes during the pre-spawning stage at the end of trophoplasmatic growth), Е, Ж – transverse sections through the male gonads, З, И – testicular acini (З – pre-spawning stage, with practically absent gaps in the acini and invisible the acini walls, И – spawning stage, with gaps in the acini). Scale bars 300 µm (A), 200 µm (E), 100 µm (Ж), 50 µm (Б–Д, З, И). вя – vacuolated nucleus, сф – follicle wall, вм – vitelline membrane, РО – developing oocytes arising from a pellicle, пг – ciliated gonadal duct, с – spermatocytes, па – gaps in acini.

Basin-scale spatio-temporal development of glacial lakes in the Hindukush-Karakoram-Himalayas

This dataset offers detailed inventories of glacial lakes for the years 1990, 2000, 2010, and 2020 in the Hindu Kush Himalaya (HKH) region. Landsat satellite imagery was utilised to map glacial lakes, encompassing all lakes that are equal to or exceed 0.0036 km² in size. In the latest inventory from 2020, we identified a total of 19,284 glacial lakes, encompassing a cumulative area of 1191.81 ± 209.21 km². The investigation encompasses comprehensive mapping at the sub-basin level over the whole study area, facilitating regional-scale evaluations of glacial lake distribution and expansion. The findings reveal a significant rise in glacial lakes over the last thirty years, with a 9.31% increase in the number of lakes and a 10.09% increase in total lake area within the HKH region.

Managing multiple threats: Evaluating the efficacy of broad-scale introduced predator management in improving native mammal resilience to fire

Preventing further biodiversity loss requires understanding which processes threaten biodiversity and the effectiveness of management actions in mitigating them. Threatening processes can interact in complex and unexpected ways, but different threats are often managed independently. Here, we develop a conceptual model to identify the conditions needed for management of a single threat to achieve a net conservation benefit in systems with multiple interacting threats, and demonstrate its relevance in a replicated case-study experiment. In Australia, introduced red foxes (Vulpes vulpes) and feral cats (Felis catus) may hunt vulnerable native mammals more effectively after fire, due to loss of understory vegetation. However, the efficacy of broad-scale control of introduced predators in improving native mammal resilience to fire has not been quantified. Moreover, many studies assessing the impacts of prescribed fire on species rely on a much smaller number of independent replicates. Using a natural before-after control-impact experiment with 14 prescribed fires, each > 200 ha, we tested whether existing landscape-scale fox baiting programs influenced the immediate effects of prescribed fire on these two introduced predators and five medium-sized native mammals, including the threatened long-nosed potoroo (Potorous tridactylus) and southern brown bandicoot (Isoodon obesulus). Fox occupancy increased across both treatments post-fire, but baiting reduced the magnitude of increase. In contrast, mean feral cat occupancy remained constant in unbaited areas post-fire, but nearly doubled in fox-controlled areas, possibly due to a mesopredator release. Existing landscape-scale fox control programs did not clearly improve the short-term resilience of native mammals to prescribed fire (at least under the current fire and fox management regimes in our study landscapes). These results likely emphasise the need to integrate fire and predator management strategies for threatened faunal conservation iIn the presence of acute disturbances such as fire, threatened native mammals may require more intensive and integrated management of fire and introduced predators, such as  (e.g., through more intensive targeted predator controlbaiting around fire events, or intensive protection usingthrough natural or artificial refuges).

Scaling plots for 80% and 100% text-pretrained

Scaling plots for 80% and 100% (text80 and text100) in the name All are text-pretrained with 4 epochs of fine-tuning and 28b of image-text training with 10% image caption and 90% text (ratio 0p1 in the name) plots with various ablations at 154m, 411m, 1b scale (appended in the name) The text data is DCLM dataset and the image data is DatacompDR

Supplementary data to "The effects of small-scale heterogeneity on biomonitoring of desmid phytobenthos in Central European temperate mountain peatlands"

The supplementary data consist of the files including the species-in-samples data and their associated NCV scores used for the analyses described in the manuscript submitted to hydrobiologia. In addition, two R scripts used for the analyses are included, too.

BIO4AFRICA_Small-scale HTC batch unit_Dataset1_261124_v1

Hydrochar Characterization Database: This database reflects the characterization of hydrochar produced at IHE Delft for Water Education within the framework of the Bio4Africa project. It includes the experimental operational conditions, the types of biomass used, the mass yield of the product, and the properties of the solid and liquid outputs of the process. Machine learning database: This is an analysis ready database to be used by user who are interested in predicting the properties of hydrochar using machine learning approaches. The database combines the experimental results from IHE and the experimental results from the literature. The data are standardized in the same manner, allowing the users to directly use it without any required edits.