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opencc-by-4.0Jul 2008View details →

Figure 4 in Brittle stars (Echinodermata: Ophiuroidea) from La Réunion and the systematic position of Ophiocanops Koehler, 1922

Figure 4. Digital images of Amphioplus sp.; A, ventral view; B, dorsal view; C, arm in dorsal view; SEM images of Amphipholis squamata; D, dorsal view; E, ventral view. Abbreviations: AS, adoral shield; DAP, dorsal arm plate; GP, genital plates; LAP, lateral arm plate; OP, oral papillae; OS, oral shield; RS, radial shield; VAP, ventral arm plate. Scale bars in millimetres.

FIG. 4. — A in Révision taxonomique de douze espèces du genre Cynorkis Thouars (Orchidaceae, Habenariinae) de La Réunion, basée sur une approche morphologique et écologique

FIG. 4. — A, Distribution altitudinale de Cynorkis pleiadea (Frapp.) Schltr. (barres blanches, N = 23) et Cynorkis constellata (Frapp.) Schltr. (barres noires, N = 67); B, distribution géographique de Cynorkis pleiadea (Frapp.) Schltr. (points blancs) et Cynorkis constellata (Frapp.) Schltr. (points noirs) à La Réunion.

FIG. 2 in Révision taxonomique de douze espèces du genre Cynorkis Thouars (Orchidaceae, Habenariinae) de La Réunion, basée sur une approche morphologique et écologique

FIG. 2. — Variation de la morphologie florale chez Cynorkis constellata (Frapp.) Schltr. A, C, D, fleurs vues de face; B, fleurs vues de profil; E, fleurs sans et avec éperon vuES de dessous. Photos: A, B, E, François Vandeschricke; C, D, Véronique Lavergne.

FIG. 1 in Révision taxonomique de douze espèces du genre Cynorkis Thouars (Orchidaceae, Habenariinae) de La Réunion, basée sur une approche morphologique et écologique

FIG. 1. — Variation de la morphologie de l'éperon et du labelle chez Cynorkis pleiadea et correspondance avec 5 espèces décrites par Frappier in Cordemoy (1895): A, B, Hemiperis simplex Frapp.;C, D, Hemiperis crispa Frapp.;E, F, Hemiperis brachycentra Frapp.;G, H, Hemiperis pleiadea Frapp.;I, Hemiperis ludens Frapp. Tous les individus photographiés proviennent d'une même population (Entre-deux, 1200 m). Photos de Véronique Lavergne.

FIG. 5 in Révision taxonomique de douze espèces du genre Cynorkis Thouars (Orchidaceae, Habenariinae) de La Réunion, basée sur une approche morphologique et écologique

FIG. 5. — Période de floraison de Cynorkis pleiadea (Frapp.) Schltr. (barres blanches, N = 26) et Cynorkis constellata (Frapp.) Schltr. (barres noires, N = 71).

FIG. 3 in Révision taxonomique de douze espèces du genre Cynorkis Thouars (Orchidaceae, Habenariinae) de La Réunion, basée sur une approche morphologique et écologique

FIG. 3. — ACP portant sur six caractères végétatifs et 11 caractères floraux: C. pleiadea en bleu, C. constellata en rouge. Abréviations: Ht, hauteur; loF, longueur de la première feuille; laF, largeur de la première feuille; NbF, nombre de feuilles; Pil, pilosité; Nbr, nombre bractées stériles; Finf, nombre de fleurs par inflorescence; Lgov, longueur de l'ovaire; LoSM, longueur du sépale médian; LaSM, largeur du sépale médian; LoSL, longueur du sépale latéral; LaSL, largeur du sépale latéral; LoPL, longueur du pétale latéral; LaPL, largeur du pétale latéral; LoL, longueur du labelle; LaL, largeur du labelle; Loep, longueur de l'éperon. Représentation des individus et variables (plan factoriel 1, 2; graphique de gauche) et (plan factoriel 1, 3; graphique de droite). La variable pilosité est exclue des analyses.

Fig. 3 - 5 Fractuosella breoni n. s in Une nouvelle espèce de Cigale de La Réunion (Tibicenidae, Gymnotympanini) [Hom. Cicadoidea]

Fig. 3 - 5 Fractuosella breoni n. s sp?.., paratype mâle. - 3 fémur antérieur gauche; 4 - 5 i bloc génital et bloc anal vus de profil gauche, puis vemralement.

Fig. 1 - 2 Fractuosella breoni n in Une nouvelle espèce de Cigale de La Réunion (Tibicenidae, Gymnotympanini) [Hom. Cicadoidea]

Fig. 1 - 2 Fractuosella breoni n. sp., holotype mâle. - l habitus, G. X 2; 2 tête et pronotum, G x 6,25. Photographies Michel Boulard & Madeleine Franey.

Figgénital.3-5et blocFractuosellaanal vusdebreoni profiln.sp.,gauche,paratype puismâle.ventralement— 3:.fémur fémurantérieur TODO gauche; TODO TODO TODO TODO TODO TODO TODO TODO TODO TODO TODO in Une nouvelle espèce de Cigale de La Réunion (Tibicenidae, Gymnotympanini) [Hom. Cicadoidea]

Figgénital.3-5et blocFractuosellaanal vusdebreoni profiln.sp.,gauche,paratype puismâle.ventralement— 3:.fémur fémurantérieur TODO gauche; TODO TODO TODO TODO TODO TODO TODO TODO TODO TODO TODO

Fig6,25 in Une nouvelle espèce de Cigale de La Réunion (Tibicenidae, Gymnotympanini) [Hom. Cicadoidea]

Fig6,25..1-2 PhotographiesFractuosella Michelbreoni n.spBoulard., &holotypeMadeleinemâle. — 1Franey.habitus, G. x 2; 2 tête et pronotum, TODO TODO TODO TODO TODO TODO TODO TODO TODO

opencc-by-4.0Dec 2022View details →

Dataset used for the study of "Validation of Aeolus wind profiles using ground-based lidar and radiosonde observations at La Réunion Island and the Observatoire de Haute Provence"

Datasets used to create the figures and statistical study in "Validation of Aeolus wind profiles using ground-based lidar and radiosonde observations at La Réunion Island and the Observatoire de Haute Provence"

opencc-by-4.0Dec 2006View details →

Figs 1–5 in A new species of Fannia Robineau-Desvoidy, 1830 from Madagascar and La Réunion (Diptera: Fanniidae)

Figs 1–5. Fannia malagasica sp. n.: (1) Sternite 5 of ơ; (2) Hypopygium of ơ, posterior view; (3) Surstylus of ơ, lateral view; (4) Ovipositor of ^, dorsal view; (5) Ovipositor of ^, ventral view. (ơ from Madagascar, Manjakatompa Forest Station; ^from Madagascar, Anjavidilava.)

opencc-by-4.0Aug 2023View details →

Etat écologique des récifs coralliens de La Réunion selon la méthode CORRAM

I. Résumé - métadonnées Le projet UTOPIAN porté par l'association BESTRUN (2021 - 2023) puis par ARBRE (2023 - ...) a pour objectif d'évaluer l'état de santé des récifs coralliens. Cet état se base sur la méthode CORRAM (Coral Reef Rapid Assessment Method) pour le substrat dur et SEARAM (Seagrass Rapid Assessment Method) pour le substrat meuble. Des paramètres intuitives à identifier sont relevés sur le terrain, puis transformés en "scores" de 0 à 3. Ainsi plusieurs protocoles sont mis en &oelig;uvre et sont détaillés dans les paragraphes suivants. Les stations sont choisies en respectant un minimum de maillage soit de manière aléatoire une fois sur le terrain pour platier et DAR soit a priori (pente externe du projet UTOPIAN) : · Peuplement benthique : Point fixe de 100m² · Faune mobile : Parcours aléatoire de 10min au sein d'une maille de 60 x 60 m (3 600 m²) soit environ 800 m². Les référents qui ont contribué à la BDD · pour les méthodes CORRAM et SEARAM Mathieu PINAULT (MAREX), · pour le projet UTOPIAN : Léo BROUDIC (Best Run)   1. Protocole Substrats durs La station d'échantillonnage = 1 zone circulaire d’environ 100 m² (rayon de 5 à 6 m) sur laquelle l’observateur peut se déplacer. L'évaluation visuelle de la composition de la communauté benthique est réalisée sur une zone de 100m² (non matérialisée sur le terrain), parmi les paramètres mesurés on trouve : la couverture corallienne (taux de recouvrement absolu), la couverture d'Acropores (relatif à la couverture corallienne), la couverture de la faune sessile benthique (taux de recouvrement absolu de l'ensemble des corallimorphes, éponges, coraux mous, anémones, tubipores, ascidies, autres), la couverture des macroalgues (taux de recouvrement absolu des algues dressées > 2cm), l'état de santé, la complexité structurelle et la taille des colonies ; ces trois derniers paramètres sont évalués de manière qualitative. De manière concomitante les colonies juvéniles de corail sont comptabilisées sur 16 quadrats de 25 cm de côté (seul le total est pris en considération : densité sur 1 m²). Sur ces mêmes quadrats les oursins sont dénombrés par espèces, le résultat est donné par station, et non par quadrat. Enfin, la couverture de cyanobactérie est évaluée de manière semi-quantitative : si celle-ci est supérieure à 50%, il est noté "1" sinon, "0". 2. Protocole Substrats meubles La station d'échantillonnage = 1 zone circulaire d’environ 100 m² (rayon de 5 à 6 m) sur laquelle l’observateur peut se déplacer. L'évaluation visuelle de la composition de la communauté benthique est réalisée sur une zone de 100 m² (non matérialisée sur le terrain), parmi les paramètres mesurés on trouve : le pourcentage de substrats meubles sur la station, la sédimentation et la granulométrie ; ces deux derniers paramètres sont évalués de manière qualitative. De manière plus spécifique, la communauté d'herbiers est suivie : le taux de fragmentation est évalué à l'échelle des 100 m², un quadrat de 1 m² (divisé en 16 quadrat pour faciliter le comptage) par station est réalisé pour évaluer la couverture d'herbier, un quadrat de 25 cm de côté (pris aléatoirement) est réalisé pour mesurer le nombre de brins, la taille moyenne des brins et le pourcentage d'épibioses . De même que pour les substrats durs, 16 quadrats de 25cm de côté sont utilisés pour dénombrer les oursins par espèces, le résultat est donné par station, et non par quadrat. 3. Protocole Poissons / Holothuries Les poissons et les holothuries sont comptabilisés le long d'un parcours aléatoire de 10 minutes dans une zone correspondant à un carré de 60 m de côté. Les coordonnées données correspondent au centroïde du parcours aléatoire. Les individus rencontrés sont dénombrés par espèce. Pour les poissons, 3 "dénombrements" de poissons sont réalisés : · Dénombrement des poissons d’une liste de familles Seuls les individus appartenant aux familles ciblées par le suivi sont dénombrés. Ces familles cibles sont différentes en fonction de la zone échantillonnée (une liste pour la DAR et une liste pour les Platiers et Pente externes – à La Réunion le nombre de famille est de 6 pour chacune des listes). · Dénombrement des Scaridae Il y a une identification pouvant aller à l’espèce avec un dénombrement par espèce et par son stade de maturité (juvénile/adulte). · Dénombrement des poissons « prédateurs » de plus de 20 cm

dryad32/100

Data from: Succession and dynamics of Pristionchus nematodes and their microbiome during decomposition of Oryctes beetles on La Réunion Island

Insects and nematodes represent the most species-rich animal taxa and they occur together in a variety of associations. Necromenic nematodes of the genus Pristionchus are found on scarab beetles with more than 30 species known from worldwide samplings. However, little is known about the dynamics and succession of nematodes and bacteria during the decomposition of beetle carcasses. Here, we study nematode and bacterial succession of the decomposing rhinoceros beetle Oryctes borbonicus on La Réunion Island. We show that Pristionchus pacificus exits the arrested dauer stage seven days after the beetles´ deaths. Surprisingly, new dauers are seen after 11 days, suggesting that some worms return to the dauer stage after one reproductive cycle. We used high-throughput sequencing of the 16S rRNA genes of decaying beetles, beetle guts and nematodes to study bacterial communities in comparison to soil. We find that soil environments have the most diverse bacterial communities. The bacterial community of living and decaying beetles are more stable but one single bacterial family dominates the microbiome of decaying beetles. In contrast, the microbiome of nematodes is relatively similar even across different families. This study represents the first characterization of the dynamics of nematode-bacterial interactions during the decomposition of insects.

opencc-zeroDec 2016View details →

FIGURE 4. Leiolopisma ceciliae n in A new Nactus gecko (Gekkonidae) and a new Leiolopisma skink (Scincidae) from La Réunion, Indian Ocean, based on recent fossil remains and ancient DNA sequence

FIGURE 4. Leiolopisma ceciliae n. sp., material from Grotte au Sable, St-Gilles, La Réunion. Holotype. Dentary (lateral and medial views). Scale in mm.

FIGURE 5. Leiolopisma ceciliae n in A new Nactus gecko (Gekkonidae) and a new Leiolopisma skink (Scincidae) from La Réunion, Indian Ocean, based on recent fossil remains and ancient DNA sequence

FIGURE 5. Leiolopisma ceciliae n. sp., material from Grotte au Sable, St-Gilles, La Réunion. Selected paratypes, from individuals of various sizes. Top row: left mandible (lateral view), right maxilla (lateral view), fused left postfrontal and postorbital bone (dorsal view), left quadrate (posterior view). Middle row: right dentary (medial view), posterior left mandible (lateral view). Bottom row: Left humerus, left pelvis (lateral view), sacrum (dorsal view), presacral vertebrae (lateral and ventral views), right femur, tibia. Scale in mm.

FIGURE 6. Leiolopisma ceciliae n in A new Nactus gecko (Gekkonidae) and a new Leiolopisma skink (Scincidae) from La Réunion, Indian Ocean, based on recent fossil remains and ancient DNA sequence

FIGURE 6. Leiolopisma ceciliae n. sp., material from Grotte au Sable, St-Gilles, La Réunion. Paratype. Frontal of juvenile animal (ventral and dorsal views, anterior upwards). Scale in mm.

FIGURE 7 in A new Nactus gecko (Gekkonidae) and a new Leiolopisma skink (Scincidae) from La Réunion, Indian Ocean, based on recent fossil remains and ancient DNA sequence

FIGURE 7. Variation in number of teeth with size of maxillae (above) and dentary bones (below) in different species of the Mascarene skink genus Leiolopisma. Stars: L. ceciliae n. sp. from La Réunion. Assemblage to left: L. telfairii from Mauritius (triangles: living animals from Round Island, dots: subfossil material from mainland of Mauritius). Assemblage to right: subfossil L. mauritiana from mainland of Mauritius. Some symbols indicate more than one specimen.

FIGURE 2. Nactus soniae n in A new Nactus gecko (Gekkonidae) and a new Leiolopisma skink (Scincidae) from La Réunion, Indian Ocean, based on recent fossil remains and ancient DNA sequence

FIGURE 2. Nactus soniae n. sp., material from Grotte au Sable, St-Gilles, La Réunion. c. Paratypes. Left maxilla and right dentary (medial views). Scales in mm.

FIGURE 3. Nactus soniae n in A new Nactus gecko (Gekkonidae) and a new Leiolopisma skink (Scincidae) from La Réunion, Indian Ocean, based on recent fossil remains and ancient DNA sequence

FIGURE 3. Nactus soniae n. sp. Scanning electron microscope photograph of holotype frontal bone (dorsal view).