Find research datasets worth reusing
Search datasets from major research repositories and use ShareScore to quickly assess how well each record supports discovery, access, and reuse.
4
datasets available to search
ShareScore release 0.9.0
Dataset results
4 results for “Anodonta anatina”
РИС. 8. Примеры проблем с иЗображением при работе на СЭМ. А, В. Засветка раЗличных частей раковин глохидиев (А. Anodonta anatina (=Colletopterum), оЗ. Красное, ХакасиЯ. В. Inversiunio reinianus, оЗ. Бива, о-в Хонсю, ЯпониЯ). C. РаЗнаЯ скорость сканированиЯ (слева – очень быстраЯ, справа – медленнаЯ) наружной поверхности глохидиЯ (Anodonta cygnea, р. Ялма, МосковскаЯ обл.). D. Артефакты в виде гориЗонтальных полос вследствие накоплениЯ отрицательного ЗарЯда при недостаточном напылении внутренней поверхности глохидиЯ (Nodularia douglasiae, ПетровскаЯ протока, бассейн р. Амур, Хабаровский кр.). МасШтаб 50 мкм (А, В), 2 мкм (С), 5 мкм (D). Микроскопы Zeiss EVO 40 (А, С, D), Zeiss MERLIN (В), напыление углеродом (А, С), хромом (В, D). in Методика подготовки раковин глохидиев (Bivalvia, Unionidae) длЯ работы на сканируюЩем Электронном микроскопе
РИС. 8. Примеры проблем с иЗображением при работе на СЭМ. А, В. Засветка раЗличных частей раковин глохидиев (А. Anodonta anatina (=Colletopterum), оЗ. Красное, ХакасиЯ. В. Inversiunio reinianus, оЗ. Бива, о-в Хонсю, ЯпониЯ). C. РаЗнаЯ скорость сканированиЯ (слева – очень быстраЯ, справа – медленнаЯ) наружной поверхности глохидиЯ (Anodonta cygnea, р. Ялма, МосковскаЯ обл.). D. Артефакты в виде гориЗонтальных полос вследствие накоплениЯ отрицательного ЗарЯда при недостаточном напылении внутренней поверхности глохидиЯ (Nodularia douglasiae, ПетровскаЯ протока, бассейн р. Амур, Хабаровский кр.). МасШтаб 50 мкм (А, В), 2 мкм (С), 5 мкм (D). Микроскопы Zeiss EVO 40 (А, С, D), Zeiss MERLIN (В), напыление углеродом (А, С), хромом (В, D).
РИС. 3. Примеры дефектов глохидиев при работе на СЭМ. A, B. НаружнаЯ поверхность раковины глохидиЯ беЗ верхнего слоЯ, раЗруШенного иЗ-За долгой очистки в растворе Щелочи (Anodonta anatina (=Colletopterum), р. Обь, НовосибирскаЯ обл.). C. ТреЩины на раковине глохидиЯ вследствие иЗлиШнего высуШиваниЯ перед напылением (Middendorffinaia mongolica, р. Артёмовка, Приморский кр.). D. ПоврежденнаЯ микроскульптура наружного слоЯ глохидиЯ иЗ-За недостаточного обеЗвоживаниЯ перед напылением (Anodonta anatina, р. Москва). E. «Замыленность» микроскульпуры наружной поверхности глохидиЯ иЗ-За напылениЯ на недостаточно просуШенные раковины (Sinanodonta schrenkii, р. ИлистаЯ, бассейн оЗ. Ханка, Приморский кр.). F. Поврежденный, сморЩенный наружный слой раковины глохидиЯ иЗ-За пересуШиваниЯ перед напылением (Kunashiria japonica, оЗ. Чухуненко, Приморский кр.). МасШтаб 1 мкм (A, B), 5 мкм (C), 10 мкм (D, E, F). Микроскопы Zeiss MERLIN (A–D), Zeiss EVO 40 (E, F), напыление хромом (А–Е), углеродом (F). in Методика подготовки раковин глохидиев (Bivalvia, Unionidae) длЯ работы на сканируюЩем Электронном микроскопе
РИС. 3. Примеры дефектов глохидиев при работе на СЭМ. A, B. НаружнаЯ поверхность раковины глохидиЯ беЗ верхнего слоЯ, раЗруШенного иЗ-За долгой очистки в растворе Щелочи (Anodonta anatina (=Colletopterum), р. Обь, НовосибирскаЯ обл.). C. ТреЩины на раковине глохидиЯ вследствие иЗлиШнего высуШиваниЯ перед напылением (Middendorffinaia mongolica, р. Артёмовка, Приморский кр.). D. ПоврежденнаЯ микроскульптура наружного слоЯ глохидиЯ иЗ-За недостаточного обеЗвоживаниЯ перед напылением (Anodonta anatina, р. Москва). E. «Замыленность» микроскульпуры наружной поверхности глохидиЯ иЗ-За напылениЯ на недостаточно просуШенные раковины (Sinanodonta schrenkii, р. ИлистаЯ, бассейн оЗ. Ханка, Приморский кр.). F. Поврежденный, сморЩенный наружный слой раковины глохидиЯ иЗ-За пересуШиваниЯ перед напылением (Kunashiria japonica, оЗ. Чухуненко, Приморский кр.). МасШтаб 1 мкм (A, B), 5 мкм (C), 10 мкм (D, E, F). Микроскопы Zeiss MERLIN (A–D), Zeiss EVO 40 (E, F), напыление хромом (А–Е), углеродом (F).
РИС. 8. Примеры проблем с иЗображением при работе на СЭМ. А, В. Засветка раЗличных частей раковин глохидиев (А. Anodonta anatina (=Colletopterum), оЗ. Красное, ХакасиЯ. В. Inversiunio reinianus, оЗ. Бива, о-в Хонсю, ЯпониЯ). C. РаЗнаЯ скорость сканированиЯ (слева – очень быстраЯ, справа – медленнаЯ) наружной поверхности глохидиЯ (Anodonta cygnea, р. Ялма, МосковскаЯ обл.). D. Артефакты в виде гориЗонтальных полос вследствие накоплениЯ отрицательного ЗарЯда при недостаточном напылении внутренней поверхности глохидиЯ (Nodularia douglasiae, ПетровскаЯ протока, бассейн р. Амур, Хабаровский кр.). МасШтаб 50 мкм (А, В), 2 мкм (С), 5 мкм (D). Микроскопы Zeiss EVO 40 (А, С, D), Zeiss MERLIN (В), напыление углеродом (А, С), хромом (В, D). FIG. 8. Illustration of different problems with SEM images. A, B. Overall illumination of some glochidia shells parts (A. Anodonta anatina (= Colletopterum), Krasnoe Lake, Khakassia. B. Inversiunio reinianus, Biwa Lake, Honshu Island, Japan). C. Different scanning speed (faster on the left and slower on the right) of the exterior glochidia valve (Anodonta cygnea, Yalma River, Moscow Oblast). D. Artifacts as horizontal stripes because of additional accumulation of a negative charge due to insufficient coating of the interior glochidia valve (Nodularia douglasiae, Petrovskaya channel, Amur River basin, Khabarovsk Krai). Scale bars 50 μm (A, B), 2 μm (C), 5 μm (D). Zeiss EVO 40 (A, C, D) and Zeiss MERLIN (B) microscopes, sputter coating with carbon (A, C) and chromium (B, D). in Методика подготовки раковин глохидиев (Bivalvia, Unionidae) длЯ работы на сканируюЩем Электронном микроскопе
РИС. 8. Примеры проблем с иЗображением при работе на СЭМ. А, В. Засветка раЗличных частей раковин глохидиев (А. Anodonta anatina (=Colletopterum), оЗ. Красное, ХакасиЯ. В. Inversiunio reinianus, оЗ. Бива, о-в Хонсю, ЯпониЯ). C. РаЗнаЯ скорость сканированиЯ (слева – очень быстраЯ, справа – медленнаЯ) наружной поверхности глохидиЯ (Anodonta cygnea, р. Ялма, МосковскаЯ обл.). D. Артефакты в виде гориЗонтальных полос вследствие накоплениЯ отрицательного ЗарЯда при недостаточном напылении внутренней поверхности глохидиЯ (Nodularia douglasiae, ПетровскаЯ протока, бассейн р. Амур, Хабаровский кр.). МасШтаб 50 мкм (А, В), 2 мкм (С), 5 мкм (D). Микроскопы Zeiss EVO 40 (А, С, D), Zeiss MERLIN (В), напыление углеродом (А, С), хромом (В, D). FIG. 8. Illustration of different problems with SEM images. A, B. Overall illumination of some glochidia shells parts (A. Anodonta anatina (= Colletopterum), Krasnoe Lake, Khakassia. B. Inversiunio reinianus, Biwa Lake, Honshu Island, Japan). C. Different scanning speed (faster on the left and slower on the right) of the exterior glochidia valve (Anodonta cygnea, Yalma River, Moscow Oblast). D. Artifacts as horizontal stripes because of additional accumulation of a negative charge due to insufficient coating of the interior glochidia valve (Nodularia douglasiae, Petrovskaya channel, Amur River basin, Khabarovsk Krai). Scale bars 50 μm (A, B), 2 μm (C), 5 μm (D). Zeiss EVO 40 (A, C, D) and Zeiss MERLIN (B) microscopes, sputter coating with carbon (A, C) and chromium (B, D).
РИС. 6. Крючки глохидиев, поврежденные во времЯ подготовки к работе на СЭМ. А, В. При очистке методом мацерированиЯ [Beringiana beringiana, оЗ. Пернатое, о-в ПарамуШир, Курильские о-ва (А) и оЗ. Элергытгын, бассейн р. Хатырка, Камчатка (В)]. С. При очистке в растворе Щелочи [Anodonta anatina (=Colletopterum), оЗ. Арахлей, Забайкальский кр.]. D. Во времЯ суШки перед напылением [Anodonta anatina (=Colletopterum), р. Ирба, КрасноЯрский кр.]. МасШтаб 100 мкм (А–С), 10 мкм (D). Микроскопы Zeiss MERLIN (А, B), Zeiss EVO 40 (С, D), напыление хромом. FIG. 6. Hooks damaged during SEM preparation. A, B. By maceration cleaning [Beringiana beringiana, Pernatoe Lake, Paramushir Island, Kuril Islands (A) and Lake Elergytgyn, basin of the Khatyrka River, Kamchatka (B)]. C. By alkali cleaning [Anodonta anatina (= Colletopterum), Arakhley Lake, Zabaikalsky Krai]. D. By drying before sputter coating [Anodonta anatina (= Colletopterum), Irba River, Krasnoyarsk Krai]. Scale bars 100 μm (A–C), 10 μm (D). Zeiss MERLIN (A, B) and Zeiss EVO 40 (C, D) microscopes, sputter coating with chromium. in Методика подготовки раковин глохидиев (Bivalvia, Unionidae) длЯ работы на сканируюЩем Электронном микроскопе
РИС. 6. Крючки глохидиев, поврежденные во времЯ подготовки к работе на СЭМ. А, В. При очистке методом мацерированиЯ [Beringiana beringiana, оЗ. Пернатое, о-в ПарамуШир, Курильские о-ва (А) и оЗ. Элергытгын, бассейн р. Хатырка, Камчатка (В)]. С. При очистке в растворе Щелочи [Anodonta anatina (=Colletopterum), оЗ. Арахлей, Забайкальский кр.]. D. Во времЯ суШки перед напылением [Anodonta anatina (=Colletopterum), р. Ирба, КрасноЯрский кр.]. МасШтаб 100 мкм (А–С), 10 мкм (D). Микроскопы Zeiss MERLIN (А, B), Zeiss EVO 40 (С, D), напыление хромом. FIG. 6. Hooks damaged during SEM preparation. A, B. By maceration cleaning [Beringiana beringiana, Pernatoe Lake, Paramushir Island, Kuril Islands (A) and Lake Elergytgyn, basin of the Khatyrka River, Kamchatka (B)]. C. By alkali cleaning [Anodonta anatina (= Colletopterum), Arakhley Lake, Zabaikalsky Krai]. D. By drying before sputter coating [Anodonta anatina (= Colletopterum), Irba River, Krasnoyarsk Krai]. Scale bars 100 μm (A–C), 10 μm (D). Zeiss MERLIN (A, B) and Zeiss EVO 40 (C, D) microscopes, sputter coating with chromium.
ScienceDex guides
Understand access before you commit
These curated guides explain access requirements, typical timelines, costs, and reuse considerations for widely used research datasets.
Allen Brain Atlas
Allen Brain Atlas is an Allen Institute collection of brain map atlases, datasets, APIs, and analysis tools covering mouse, human, and non-human primate brain resources.
Annotated Behaviour and Observability Dataset (ABODe)
ABODe is a University of Edinburgh DataShare dataset for behavior classification in group-housed mice using home-cage video, identities, bounding boxes, ground-plate positions, and annotator labels.
DANDI Archive for NWB datasets
DANDI is a BRAIN Initiative archive for publishing and sharing neurophysiology data, including electrophysiology, optophysiology, and behavioral data packaged as NWB and related standards.
International Brain Laboratory public data
The International Brain Laboratory public data releases expose standardized mouse decision-making experiments, including Neuropixels recordings, widefield calcium imaging, behavior, and session metadata accessed through the ONE API.
OpenNeuro
OpenNeuro is a free, open platform for sharing neuroimaging datasets, with public search, dataset pages, and download paths for web, S3, DataLad, and the OpenNeuro CLI.