Find research datasets worth reusing
Search datasets from major research repositories and use ShareScore to quickly assess how well each record supports discovery, access, and reuse.
75
datasets available to search
ShareScore release 0.9.0
Dataset results
75 results for “B method”
SMTLIB2.6 translation of proof obligations from the B formal method
<p>These files have been produced from the <a href="https://doi.org/10.5281/zenodo.7050797">POG files</a> using the program ppTransSmt, distributed with Atelier B.</p> <p>The source code of this version of ppTransSmt correspond to git commit `abb8ad04003803ea3683d8069363681e92308ebf` (in the private repository<br> of Atelier B).<br> </p>
Proof obligations from the B formal method
<p>Proof obligations generated with Atelier B, an IDE for the B method and Event-B.</p> <p>The files are in the POG format.</p>
Dataset from "Deciphering the Catalytic Mechanism of Virginiamycin B Lyase with Multiscale Methods and Molecular Dynamics Simulations"
<p>Dataset from "Deciphering the Catalytic Mechanism of Virginiamycin B Lyase with Multiscale Methods and Molecular Dynamics Simulations", containing the most relevant simulation output trajectories ran with GROMACS 2021:</p> <p>1) apo simulations, including wildtype, Y28F, and H228A;<br> 2) holo simulations, including the two tested protonation states for the antibiotic;<br> 3) mutant simulations, including Y18F, H228A, E268Q, and E284Q.</p> <p>All folders contain the topology file (.top), restraint files (.itp), the initial coordinates file (.gro), and the coordinates after the first minimization (em1.gro). The output trajectories of all replicas (per system) have been concatenated in a single compressed file (.xtc).</p>
Рис. 8. 3D–диаграммы пространственного распределениЯ обилиЯ моллюска M. catrusiana (А), фитомассы (В), твердости грунта на глубине 5–10 см (C) и доли агрегатных фракций 3–5 мм (D) на участке № 2 в 2011 г. (единицы иЗмерениЯ осей Х и Y даны в метрах). Fig. 8. 3D–diagrams of the abundance spatial distribution of the land snail M. catrusiana (A), phytomass (B), 0–10 cm layer soil penetration resistance (C), aggregate particle size 3–5 mm (D) at the site 1 in 2011 (axes X and Y presented in meters). in Analysis of the spatial distribution patterns of the land snail populations: a geostatistic method approach
Рис. 8. 3D–диаграммы пространственного распределениЯ обилиЯ моллюска M. catrusiana (А), фитомассы (В), твердости грунта на глубине 5–10 см (C) и доли агрегатных фракций 3–5 мм (D) на участке № 2 в 2011 г. (единицы иЗмерениЯ осей Х и Y даны в метрах). Fig. 8. 3D–diagrams of the abundance spatial distribution of the land snail M. catrusiana (A), phytomass (B), 0–10 cm layer soil penetration resistance (C), aggregate particle size 3–5 mm (D) at the site 1 in 2011 (axes X and Y presented in meters).
Рис. 6. Графики Зависимости оценок варианс (S2) от средней плотности (D) популЯций наЗемных моллюсков B. cylindrica (А) и M. cartusiana (В): 1 – участок № 1, 2010 г.; 2 – участок № 2, 2011 г.; 3 – участок № 4, 2012 г.; 4 – участок № 5, 2012 г. Fig. 6. Variance estimation (S2) and average density (D) of the land snail B. cylindrica (А) and M. cartusiana (В) population scatter plots: 1 – site 1, 2010; 2 – site 2, 2011; 3 – site 4, 2012; 4 – site 5, 2012. in Analysis of the spatial distribution patterns of the land snail populations: a geostatistic method approach
Рис. 6. Графики Зависимости оценок варианс (S2) от средней плотности (D) популЯций наЗемных моллюсков B. cylindrica (А) и M. cartusiana (В): 1 – участок № 1, 2010 г.; 2 – участок № 2, 2011 г.; 3 – участок № 4, 2012 г.; 4 – участок № 5, 2012 г. Fig. 6. Variance estimation (S2) and average density (D) of the land snail B. cylindrica (А) and M. cartusiana (В) population scatter plots: 1 – site 1, 2010; 2 – site 2, 2011; 3 – site 4, 2012; 4 – site 5, 2012.
Рис. 5. Коррелограммы покаЗателей обилиЯ наЗемных моллюсков раЗных воЗрастных групп (1 – ювенильные; 2 – вЗрослые; 3 – все вместе): A – H. lucorum, участок № 1, 2010 г.; B – Ch. tridens, участок № 2, 2011 г.; C – Ch. tridens, участок № 4, 2012 г.); D – Ch. tridens, участок № 5, 2012 г. (достоверные оценки индекса Морана отмечены Залитыми Значками). Fig. 5. Spatial correlogram of the land snail different age groups abundance (1 – juvenile; 2 – adult; 3 – total): A – H. lucorum, site 1, 2010; B – Ch. tridens, site 2, 2011; C – Ch. tridens, site 4, 2012; D – Ch. tridens, site 5, 2012 (Moran index confidence value presented by filled signs). in Analysis of the spatial distribution patterns of the land snail populations: a geostatistic method approach
Рис. 5. Коррелограммы покаЗателей обилиЯ наЗемных моллюсков раЗных воЗрастных групп (1 – ювенильные; 2 – вЗрослые; 3 – все вместе): A – H. lucorum, участок № 1, 2010 г.; B – Ch. tridens, участок № 2, 2011 г.; C – Ch. tridens, участок № 4, 2012 г.); D – Ch. tridens, участок № 5, 2012 г. (достоверные оценки индекса Морана отмечены Залитыми Значками). Fig. 5. Spatial correlogram of the land snail different age groups abundance (1 – juvenile; 2 – adult; 3 – total): A – H. lucorum, site 1, 2010; B – Ch. tridens, site 2, 2011; C – Ch. tridens, site 4, 2012; D – Ch. tridens, site 5, 2012 (Moran index confidence value presented by filled signs).
Рис. 4. Коррелограммы покаЗателей обилиЯ наЗемного моллюска M. cartusiana раЗных воЗрастных групп (1 – ювенильные; 2 – вЗрослые; 3 – все вместе): A – участок № 1, 2010 г.; B – участок № 2, 2011 г.; C – участок № 4, 2012 г.); D – участок № 5, 2012 г. (достоверные оценки индекса Морана отмечены Залитыми Значками). Fig. 4. Spatial correlogram of land snail M. cartusiana age groups abundance (1 – juvenile; 2 – adult; 3 – total): A – site 1, 2010; B – site 2, 2011; C – site 4, 2012; D – site 5, 2012 (Moran index confidence value presented by filled sings). in Analysis of the spatial distribution patterns of the land snail populations: a geostatistic method approach
Рис. 4. Коррелограммы покаЗателей обилиЯ наЗемного моллюска M. cartusiana раЗных воЗрастных групп (1 – ювенильные; 2 – вЗрослые; 3 – все вместе): A – участок № 1, 2010 г.; B – участок № 2, 2011 г.; C – участок № 4, 2012 г.); D – участок № 5, 2012 г. (достоверные оценки индекса Морана отмечены Залитыми Значками). Fig. 4. Spatial correlogram of land snail M. cartusiana age groups abundance (1 – juvenile; 2 – adult; 3 – total): A – site 1, 2010; B – site 2, 2011; C – site 4, 2012; D – site 5, 2012 (Moran index confidence value presented by filled sings).
Рис. 3. Коррелограммы покаЗателей обилиЯ наЗемного моллюска B. cylindrica раЗных воЗрастных групп (1 – ювенильные; 2 – вЗрослые; 3 – все вместе): A – участок № 1, 2010 г.; B – участок № 2, 2011 г.; C – участок № 4, 2012 г.); D – участок №5, 2012 г. (достоверные оценки индекса Морана отмечены Залитыми Значками). Fig. 3. Spatial correlogram of the land snail B. cylindrica age groups abundance (1 – juvenile; 2 – adult; 3 – total): A – site 1, 2010; B – site 2, 2011; C – site 4, 2012; D – site 5, 2012 (Moran index confidence value presented by filled signs). in Analysis of the spatial distribution patterns of the land snail populations: a geostatistic method approach
Рис. 3. Коррелограммы покаЗателей обилиЯ наЗемного моллюска B. cylindrica раЗных воЗрастных групп (1 – ювенильные; 2 – вЗрослые; 3 – все вместе): A – участок № 1, 2010 г.; B – участок № 2, 2011 г.; C – участок № 4, 2012 г.); D – участок №5, 2012 г. (достоверные оценки индекса Морана отмечены Залитыми Значками). Fig. 3. Spatial correlogram of the land snail B. cylindrica age groups abundance (1 – juvenile; 2 – adult; 3 – total): A – site 1, 2010; B – site 2, 2011; C – site 4, 2012; D – site 5, 2012 (Moran index confidence value presented by filled signs).
Рис. 7. 3D–диаграммы пространственного распределениЯ обилиЯ моллюска B. cylindrica (А), фитомассы (В), проективного покрытиЯ (С), твердости грунта на глубине 5–10 см (D) на участке № 1 в 2010 г. (единицы иЗмерениЯ осей Х и Y даны в метрах). Fig. 7. 3D–diagrams of the abundance spatial distribution of the snail B. cylindrica (A), phytomass (B), plants projective cover (C), 0–10 cm layer soil penetration resistance (D) at the site 1 in 2010. (axes X and Y presented in meters). in Analysis of the spatial distribution patterns of the land snail populations: a geostatistic method approach
Рис. 7. 3D–диаграммы пространственного распределениЯ обилиЯ моллюска B. cylindrica (А), фитомассы (В), проективного покрытиЯ (С), твердости грунта на глубине 5–10 см (D) на участке № 1 в 2010 г. (единицы иЗмерениЯ осей Х и Y даны в метрах). Fig. 7. 3D–diagrams of the abundance spatial distribution of the snail B. cylindrica (A), phytomass (B), plants projective cover (C), 0–10 cm layer soil penetration resistance (D) at the site 1 in 2010. (axes X and Y presented in meters).
Рис. 2. Диаграммы распределениЯ обилиЯ наЗемного моллюска M. cartusiana: A – участок № 1, 2010 г.; B – участок № 2, 2011 г.; C – участок № 4, 2012 г.; D – участок № 5, 2012 г. (единицы иЗмерениЯ осей Х и Y даны в метрах; численность особей пропорциональна раЗмерам Шариков). Fig. 2. Diagram of the abundance distribution of the land snail M. cartusiana: A – site 1, 2010; B – site 2, 2011; C – site 4, 2012; D – site 5, 2012 (Х and Y axes presented in meters; abundance proportional to sphere sizes). in Analysis of the spatial distribution patterns of the land snail populations: a geostatistic method approach
Рис. 2. Диаграммы распределениЯ обилиЯ наЗемного моллюска M. cartusiana: A – участок № 1, 2010 г.; B – участок № 2, 2011 г.; C – участок № 4, 2012 г.; D – участок № 5, 2012 г. (единицы иЗмерениЯ осей Х и Y даны в метрах; численность особей пропорциональна раЗмерам Шариков). Fig. 2. Diagram of the abundance distribution of the land snail M. cartusiana: A – site 1, 2010; B – site 2, 2011; C – site 4, 2012; D – site 5, 2012 (Х and Y axes presented in meters; abundance proportional to sphere sizes).
Рис. 1. Диаграммы распределениЯ обилиЯ наЗемного моллюска B. cylindrica: A – участок № 1, 2010 г.; B – участок № 2, 2011 г.; C – участок № 4, 2012 г.; D – участок № 5, 2012 г. (единицы иЗмерениЯ осей Х и Y даны в метрах; численность особей пропорциональна раЗмерам Шариков). in Analysis of the spatial distribution patterns of the land snail populations: a geostatistic method approach
Рис. 1. Диаграммы распределениЯ обилиЯ наЗемного моллюска B. cylindrica: A – участок № 1, 2010 г.; B – участок № 2, 2011 г.; C – участок № 4, 2012 г.; D – участок № 5, 2012 г. (единицы иЗмерениЯ осей Х и Y даны в метрах; численность особей пропорциональна раЗмерам Шариков).
Figs. 4 A, B in Methods for controlling natural regeneration of Japanese raisintree (Hovenia dulcis Thunb.) in Araucaria forest
Figs. 4 A, B. Effects of Japanese raisintree control method on stem number and survival regarding control, base cut and root removal treatments at different evaluation times (0, 60, 120, and 180 days). The study was conducted in an Araucaria Forest in São João do Triunfo, Paraná.
Figs. 7 A, B in Methods for controlling natural regeneration of Japanese raisintree (Hovenia dulcis Thunb.) in Araucaria forest
Figs. 7 A, B. Effects of Japanese raisintree control method on sapling numbers regarding control, base cut and root removal treatments at different evaluation periods (0, 60, 120, and 180 days after the application of the control method) in an Araucaria Forest in São João do Triunfo, Paraná.
Figs. 3 A, B in Methods for controlling natural regeneration of Japanese raisintree (Hovenia dulcis Thunb.) in Araucaria forest
Figs. 3 A, B. Effects of Japanese raisintree control method on seedling number and percent survival for control, base cut and root removal treatments at different evaluation periods (0, 60, 120, and 180 days). Experiment conducted in an Araucaria Forest in São João do Triunfo, Paraná.
Figs. 5 A, B in Methods for controlling natural regeneration of Japanese raisintree (Hovenia dulcis Thunb.) in Araucaria forest
Figs. 5 A, B. Effects of Japanese raisintree control method on stem height regarding control, base cut and root removal in treatments at different evaluation times (0, 60, 120, and 180 days). The study was conducted in an Araucaria Forest in São João do Triunfo, Paraná.
Fig. 3. R, G and B in Methods to separate Lobesia botrana (Lepidoptera: Tortricidae) males from females for the implementation of sterile insect-inherited sterility technique control tactics
Fig. 3. R, G and B color values of male and female Lobesia botrana larvae during the wandering phase. A. Average R, G and B color values of wandering male and female larvae, and B. Percentages of wandering red, green and blue larvae in relation to the R, G and B values as a proportion of total male and female larvae. * P = 0.001, Tukey α = 0.05.
Рис. 1. ФиΛогенетические Αеревья хантавируса AMRV и его прироΑного носитеΛя восточноазиатской мыши Apodemus peninsulae Thomas, 1906. А. ФиΛогенетическое Αерево восточноазиатской мыши Apodemus peninsulae, построенное метоΑом «максимаΛьного правΑопоΑобия» (ML) и поΛученное на основе анаΛиза участка гена цитохрома b мтΔНК (744 п.н.). В узΛах ветвΛения указаны бутстреп-поΑΑержки, рассчитанные ΑΛя 1000 повторов. Цветными Λиниями обозначены фиΛогенетические Λинии: Αве Китайские (зеΛеный), Корейская «Korea» (синий), Амурская «Amur» (красный). ПоΛужирным шрифтом выΑеΛены собственные образцы. Названия образцов из GenBank/NCBI быΛи сокращены; B. ФиΛогенетическое Αерево из работы Α. Н. Яшиной с ΑопоΛнениями, построенное метоΑом «бΛижайшего сосеΑа» (NJ) на основе посΛеΑоватеΛьностей фрагмента М-сегмента (2737–2980 н.п.) генома хантавирусов. В узΛах ветвΛения указаны бутстреппоΑΑержки, рассчитанные ΑΛя 1000 повторов. Жирным выΑеΛены иссΛеΑованные РНК изоΛяты (Яшина 2012; Яшина и Αр. 2019) Fig. 1. Phylogenetic trees of AMRV and its natural reservoir host — the Korean field mouse Apodemus peninsulae Thomas, 1906. A. Phylogenetic tree of the Korean field mouse Apodemus peninsulae constructed by the "maximum likelihood" method (ML). The data are obtained from the analysis of the cytochrome b mtDNA gene fragments (744 bp). Bootstrap supports calculated for 1,000 repeats are indicated in the branching nodes. Colored lines indicate phylogenetic lines: two Chinese (green), Korea (blue), and Amur (red). Own samples are highlighted in bold. The names of the samples from GenBank/NCBI have been shortened; B. Phylogenetic tree from L. N. Yashina's work with additions constructed by the neighbour joining method (NJ). It is based on the sequences of an M-segment fragment (2737–2980 bp) of the hantavirus genome. Bootstrap supports calculated for 1,000 repeats are indicated in the branching nodes. The researched RNA isolates are highlighted in bold (Yashina 2012; Yashina et al. 2019) in Variability of the gene cyt b in the Korean field mouse Apodemus peninsulae Thomas, 1906 - a reservoir host of AMRV in the Khasansky District of Primorsky Krai
Рис. 1. ФиΛогенетические Αеревья хантавируса AMRV и его прироΑного носитеΛя восточноазиатской мыши Apodemus peninsulae Thomas, 1906. А. ФиΛогенетическое Αерево восточноазиатской мыши Apodemus peninsulae, построенное метоΑом «максимаΛьного правΑопоΑобия» (ML) и поΛученное на основе анаΛиза участка гена цитохрома b мтΔНК (744 п.н.). В узΛах ветвΛения указаны бутстреп-поΑΑержки, рассчитанные ΑΛя 1000 повторов. Цветными Λиниями обозначены фиΛогенетические Λинии: Αве Китайские (зеΛеный), Корейская «Korea» (синий), Амурская «Amur» (красный). ПоΛужирным шрифтом выΑеΛены собственные образцы. Названия образцов из GenBank/NCBI быΛи сокращены; B. ФиΛогенетическое Αерево из работы Α. Н. Яшиной с ΑопоΛнениями, построенное метоΑом «бΛижайшего сосеΑа» (NJ) на основе посΛеΑоватеΛьностей фрагмента М-сегмента (2737–2980 н.п.) генома хантавирусов. В узΛах ветвΛения указаны бутстреппоΑΑержки, рассчитанные ΑΛя 1000 повторов. Жирным выΑеΛены иссΛеΑованные РНК изоΛяты (Яшина 2012; Яшина и Αр. 2019) Fig. 1. Phylogenetic trees of AMRV and its natural reservoir host — the Korean field mouse Apodemus peninsulae Thomas, 1906. A. Phylogenetic tree of the Korean field mouse Apodemus peninsulae constructed by the "maximum likelihood" method (ML). The data are obtained from the analysis of the cytochrome b mtDNA gene fragments (744 bp). Bootstrap supports calculated for 1,000 repeats are indicated in the branching nodes. Colored lines indicate phylogenetic lines: two Chinese (green), Korea (blue), and Amur (red). Own samples are highlighted in bold. The names of the samples from GenBank/NCBI have been shortened; B. Phylogenetic tree from L. N. Yashina's work with additions constructed by the neighbour joining method (NJ). It is based on the sequences of an M-segment fragment (2737–2980 bp) of the hantavirus genome. Bootstrap supports calculated for 1,000 repeats are indicated in the branching nodes. The researched RNA isolates are highlighted in bold (Yashina 2012; Yashina et al. 2019)
BRAIN Journal-Performance Analysis of Unsupervised Clustering Methods for Brain Tumor Segmentation-Figure 3:(a) Input MR Image (b) Enhanced Image (c) Segmented Tumor (d) Located brain tumor
<p>Figure 3 shows three different original brain MR images, contrast enhancement of the<br> images, segmented images using K-means algorithm and finally located tumor. Fig 1.4 shows the<br> performance of the unsupervised clustering methods with the no. of tumor pixels and execution<br> time to locate the brain tumor.</p>
Figure 1. (a) Original watermark (b) extracted watermarks after compression(c) merged watermark-Discrete Wavelet Transform Method: A New Optimized Robust Digital Image Watermarking Scheme
<p>Therefore, each bit of the logo watermark is stored in one coefficient of a sub-block to keep<br> the capacity of watermarking fixed.<br> When a region of the watermarked image is destroyed; the whole watermark can be<br> extracted using other regions of the watermarked image by merging extracted watermarks. Figure 1<br> shows result of merging logo watermarks that were extracted from a compressed (with JPEG2000<br> algorithm) watermarked image.</p>
Figure 4. (a) The original "Hookah" image (b) Watermarked "Hookah" with Q=35 (c) The original "Baby" image (d) Watermarked "Baby" with Q=35-Discrete Wavelet Transform Method: A New Optimized Robust Digital Image Watermarking Scheme
<p>A set of distortions is applied to the watermarked image and the watermark is extracted from<br> the distorted image. We used bit correct rate (BCR) to evaluate our proposed algorithm and it is<br> calculated from the following equation [6].</p>
ScienceDex guides
Understand access before you commit
These curated guides explain access requirements, typical timelines, costs, and reuse considerations for widely used research datasets.
Allen Brain Atlas
Allen Brain Atlas is an Allen Institute collection of brain map atlases, datasets, APIs, and analysis tools covering mouse, human, and non-human primate brain resources.
Annotated Behaviour and Observability Dataset (ABODe)
ABODe is a University of Edinburgh DataShare dataset for behavior classification in group-housed mice using home-cage video, identities, bounding boxes, ground-plate positions, and annotator labels.
DANDI Archive for NWB datasets
DANDI is a BRAIN Initiative archive for publishing and sharing neurophysiology data, including electrophysiology, optophysiology, and behavioral data packaged as NWB and related standards.
International Brain Laboratory public data
The International Brain Laboratory public data releases expose standardized mouse decision-making experiments, including Neuropixels recordings, widefield calcium imaging, behavior, and session metadata accessed through the ONE API.
OpenNeuro
OpenNeuro is a free, open platform for sharing neuroimaging datasets, with public search, dataset pages, and download paths for web, S3, DataLad, and the OpenNeuro CLI.