Find research datasets worth reusing
Search datasets from major research repositories and use ShareScore to quickly assess how well each record supports discovery, access, and reuse.
71
datasets available to search
ShareScore release 0.9.0
Dataset results
71 results for “Merlin”
John Joseph Merlin (m2067)
<b>-- <a href="https://doi.org/10.5281/zenodo.11582199">Documentation</a> --</b><br><br><u>Name</u>: John Joseph Merlin<br><u>musiXplora-ID</u>: m2067<br><u>musiXplora-URI</u>: <a href="https://musixplora.de/mxp/m2067">https://musixplora.de/mxp/m2067</a><br><u>Gender</u>: m<br><u>Date of Birth</u>: 17 September 1735<br><u>Place of Birth</u>: Huy<br><u>Date of Death</u>: 04 May 1803<br><u>Place of Death</u>: London<br><u>First Mentioned</u>: 1760<br><u>Sectors</u>: Instrumentenbau, Museum<br><u>Professions (Historical)</u>: Erfinder, Rollschuhhersteller, Uhrmacher<br><u>Professions (Musical)</u>: Tasteninstrumentenhersteller<br><u>Main Place of Activity</u>: London<br><u>Other Places of Activity</u>: Paris<br><br><br><br><u>Changelog</u>:<br> - v0.0.1: Initial Upload.<br>
Data processing scripts and images from e-MERLIN project CY6213 used in Ghirlanda et al. 2019, Science
<p>Data processing scripts and images from e-MERLIN project CY6213 used in Ghirlanda et al. 2019, Science</p> <p> </p> <ul> <li>info.txt contains a general description of how the data was processed and the main results.</li> <li>pipeline.tar contains the data pipeline used to process the e-MERLIN observations</li> <li>imaging.py is the script used to produce the final images</li> <li>CY6213_images.tar contain the final images of the target source (not corrected by calibration factor, described in the imaging script).</li> </ul> <p> </p>
РИС. 10. НаружнаЯ микроскульптура раковин глохидиев при напылении раЗными материалами. А. Углеродом (Kunashiria haconensis, оЗ. Песчаное, о-в КунаШир, Курильские о-ва). В. Хромом (Kunashiria haconensis, оЗ. Песчаное, о-в КунаШир, Курильские о-ва). C. Хромом (Anodonta cygnea, оЗ. Хамржицкое, ПольШа). D. Золотом (Anodonta cygnea, оЗ. Хамржицкое, ПольШа). МасШтабнаЯ линейка 2 мкм. Микроскопы Zeiss EVO 40 (А, С), Zeiss MERLIN (В, D). in Методика подготовки раковин глохидиев (Bivalvia, Unionidae) длЯ работы на сканируюЩем Электронном микроскопе
РИС. 10. НаружнаЯ микроскульптура раковин глохидиев при напылении раЗными материалами. А. Углеродом (Kunashiria haconensis, оЗ. Песчаное, о-в КунаШир, Курильские о-ва). В. Хромом (Kunashiria haconensis, оЗ. Песчаное, о-в КунаШир, Курильские о-ва). C. Хромом (Anodonta cygnea, оЗ. Хамржицкое, ПольШа). D. Золотом (Anodonta cygnea, оЗ. Хамржицкое, ПольШа). МасШтабнаЯ линейка 2 мкм. Микроскопы Zeiss EVO 40 (А, С), Zeiss MERLIN (В, D).
РИС. 7. НедостаточнаЯ промывка раковин глохидиев после очиЩениЯ в Щелочи (5% КОН). А, С. «Замыленность» пор наружной поверхности створок (Cristaria tuberculata, оЗ. Ханка, Приморский кр.). B. Остаток Щелочи, выпавШий кристаллами на поверхности личинки (Unio dembeae, р. Дуко, ЭфиопиЯ). D. Капли раствора Щелочи (укаЗаны стрелками) на поверхности Шипов крючка (Nodularia douglasiae, р. Гион, о-в Хонсю, ЯпониЯ). МасШтаб 5 мкм (А, С), 2 мкм (B, D). Микроскоп Zeiss MERLIN, напыление углеродом (А, В), хромом (С, D). in Методика подготовки раковин глохидиев (Bivalvia, Unionidae) длЯ работы на сканируюЩем Электронном микроскопе
РИС. 7. НедостаточнаЯ промывка раковин глохидиев после очиЩениЯ в Щелочи (5% КОН). А, С. «Замыленность» пор наружной поверхности створок (Cristaria tuberculata, оЗ. Ханка, Приморский кр.). B. Остаток Щелочи, выпавШий кристаллами на поверхности личинки (Unio dembeae, р. Дуко, ЭфиопиЯ). D. Капли раствора Щелочи (укаЗаны стрелками) на поверхности Шипов крючка (Nodularia douglasiae, р. Гион, о-в Хонсю, ЯпониЯ). МасШтаб 5 мкм (А, С), 2 мкм (B, D). Микроскоп Zeiss MERLIN, напыление углеродом (А, В), хромом (С, D).
РИС. 8. Примеры проблем с иЗображением при работе на СЭМ. А, В. Засветка раЗличных частей раковин глохидиев (А. Anodonta anatina (=Colletopterum), оЗ. Красное, ХакасиЯ. В. Inversiunio reinianus, оЗ. Бива, о-в Хонсю, ЯпониЯ). C. РаЗнаЯ скорость сканированиЯ (слева – очень быстраЯ, справа – медленнаЯ) наружной поверхности глохидиЯ (Anodonta cygnea, р. Ялма, МосковскаЯ обл.). D. Артефакты в виде гориЗонтальных полос вследствие накоплениЯ отрицательного ЗарЯда при недостаточном напылении внутренней поверхности глохидиЯ (Nodularia douglasiae, ПетровскаЯ протока, бассейн р. Амур, Хабаровский кр.). МасШтаб 50 мкм (А, В), 2 мкм (С), 5 мкм (D). Микроскопы Zeiss EVO 40 (А, С, D), Zeiss MERLIN (В), напыление углеродом (А, С), хромом (В, D). in Методика подготовки раковин глохидиев (Bivalvia, Unionidae) длЯ работы на сканируюЩем Электронном микроскопе
РИС. 8. Примеры проблем с иЗображением при работе на СЭМ. А, В. Засветка раЗличных частей раковин глохидиев (А. Anodonta anatina (=Colletopterum), оЗ. Красное, ХакасиЯ. В. Inversiunio reinianus, оЗ. Бива, о-в Хонсю, ЯпониЯ). C. РаЗнаЯ скорость сканированиЯ (слева – очень быстраЯ, справа – медленнаЯ) наружной поверхности глохидиЯ (Anodonta cygnea, р. Ялма, МосковскаЯ обл.). D. Артефакты в виде гориЗонтальных полос вследствие накоплениЯ отрицательного ЗарЯда при недостаточном напылении внутренней поверхности глохидиЯ (Nodularia douglasiae, ПетровскаЯ протока, бассейн р. Амур, Хабаровский кр.). МасШтаб 50 мкм (А, В), 2 мкм (С), 5 мкм (D). Микроскопы Zeiss EVO 40 (А, С, D), Zeiss MERLIN (В), напыление углеродом (А, С), хромом (В, D).
РИС. 5. ЗагрЯЗнение готовых обраЗцов длЯ СЭМ при длительном хранении в негерметичных условиЯх (A–C) либо при хранении проШедШих процедуру мацерированиЯ беЗ последуюЩего обеЗЗараживаниЯ (D, E). A–С. Бактерии на поверхности глохидиев (Nodularia douglasiae, р. ИлистаЯ, бассейн оЗ. Ханка, Приморский кр.). А. ВнеШний вид глохидиЯ, основное ЗагрЯЗнение на створке в верхней части фото. В. Крючок глохидиЯ, основное ЗагрЯЗнение в левой части фото. С. Створка, вид иЗнутри. D. Единичные бактерии на створке глохидиЯ, вид иЗнутри (Kunashiria japonica, оЗ. Утиное, о-в Зелёный, Курильские о-ва). E. Гифы гриба на створке глохидиЯ, вид на наружную пору (Beringiana beringiana, оЗ. АЗабачье, Камчатка). МасШтаб 50 мкм (А, C), 10 мкм (В, D), 1 мкм (Е). Микроскопы Zeiss MERLIN (А, B, C, E), Zeiss EVO 40 (D), напыление хромом (А–С), Золотом (D), углеродом (Е). in Методика подготовки раковин глохидиев (Bivalvia, Unionidae) длЯ работы на сканируюЩем Электронном микроскопе
РИС. 5. ЗагрЯЗнение готовых обраЗцов длЯ СЭМ при длительном хранении в негерметичных условиЯх (A–C) либо при хранении проШедШих процедуру мацерированиЯ беЗ последуюЩего обеЗЗараживаниЯ (D, E). A–С. Бактерии на поверхности глохидиев (Nodularia douglasiae, р. ИлистаЯ, бассейн оЗ. Ханка, Приморский кр.). А. ВнеШний вид глохидиЯ, основное ЗагрЯЗнение на створке в верхней части фото. В. Крючок глохидиЯ, основное ЗагрЯЗнение в левой части фото. С. Створка, вид иЗнутри. D. Единичные бактерии на створке глохидиЯ, вид иЗнутри (Kunashiria japonica, оЗ. Утиное, о-в Зелёный, Курильские о-ва). E. Гифы гриба на створке глохидиЯ, вид на наружную пору (Beringiana beringiana, оЗ. АЗабачье, Камчатка). МасШтаб 50 мкм (А, C), 10 мкм (В, D), 1 мкм (Е). Микроскопы Zeiss MERLIN (А, B, C, E), Zeiss EVO 40 (D), напыление хромом (А–С), Золотом (D), углеродом (Е).
РИС. 3. Примеры дефектов глохидиев при работе на СЭМ. A, B. НаружнаЯ поверхность раковины глохидиЯ беЗ верхнего слоЯ, раЗруШенного иЗ-За долгой очистки в растворе Щелочи (Anodonta anatina (=Colletopterum), р. Обь, НовосибирскаЯ обл.). C. ТреЩины на раковине глохидиЯ вследствие иЗлиШнего высуШиваниЯ перед напылением (Middendorffinaia mongolica, р. Артёмовка, Приморский кр.). D. ПоврежденнаЯ микроскульптура наружного слоЯ глохидиЯ иЗ-За недостаточного обеЗвоживаниЯ перед напылением (Anodonta anatina, р. Москва). E. «Замыленность» микроскульпуры наружной поверхности глохидиЯ иЗ-За напылениЯ на недостаточно просуШенные раковины (Sinanodonta schrenkii, р. ИлистаЯ, бассейн оЗ. Ханка, Приморский кр.). F. Поврежденный, сморЩенный наружный слой раковины глохидиЯ иЗ-За пересуШиваниЯ перед напылением (Kunashiria japonica, оЗ. Чухуненко, Приморский кр.). МасШтаб 1 мкм (A, B), 5 мкм (C), 10 мкм (D, E, F). Микроскопы Zeiss MERLIN (A–D), Zeiss EVO 40 (E, F), напыление хромом (А–Е), углеродом (F). in Методика подготовки раковин глохидиев (Bivalvia, Unionidae) длЯ работы на сканируюЩем Электронном микроскопе
РИС. 3. Примеры дефектов глохидиев при работе на СЭМ. A, B. НаружнаЯ поверхность раковины глохидиЯ беЗ верхнего слоЯ, раЗруШенного иЗ-За долгой очистки в растворе Щелочи (Anodonta anatina (=Colletopterum), р. Обь, НовосибирскаЯ обл.). C. ТреЩины на раковине глохидиЯ вследствие иЗлиШнего высуШиваниЯ перед напылением (Middendorffinaia mongolica, р. Артёмовка, Приморский кр.). D. ПоврежденнаЯ микроскульптура наружного слоЯ глохидиЯ иЗ-За недостаточного обеЗвоживаниЯ перед напылением (Anodonta anatina, р. Москва). E. «Замыленность» микроскульпуры наружной поверхности глохидиЯ иЗ-За напылениЯ на недостаточно просуШенные раковины (Sinanodonta schrenkii, р. ИлистаЯ, бассейн оЗ. Ханка, Приморский кр.). F. Поврежденный, сморЩенный наружный слой раковины глохидиЯ иЗ-За пересуШиваниЯ перед напылением (Kunashiria japonica, оЗ. Чухуненко, Приморский кр.). МасШтаб 1 мкм (A, B), 5 мкм (C), 10 мкм (D, E, F). Микроскопы Zeiss MERLIN (A–D), Zeiss EVO 40 (E, F), напыление хромом (А–Е), углеродом (F).
РИС. 4. НаружнаЯ микроскульптура глохидиев при раЗных условиЯх очистки раковин (Inversiunio yanagawensis, р. Гион, о-в Хонсю, ЯпониЯ) в растворе Щелочи. А. НеповрежденнаЯ микроскульптура. B. ПоврежденнаЯ при передержке в растворе Щелочи. МасШтаб 2 мкм. Микроскопы Zeiss MERLIN (А), Zeiss EVO 40 (В), напыление хромом (А), Золотом (В). in Методика подготовки раковин глохидиев (Bivalvia, Unionidae) длЯ работы на сканируюЩем Электронном микроскопе
РИС. 4. НаружнаЯ микроскульптура глохидиев при раЗных условиЯх очистки раковин (Inversiunio yanagawensis, р. Гион, о-в Хонсю, ЯпониЯ) в растворе Щелочи. А. НеповрежденнаЯ микроскульптура. B. ПоврежденнаЯ при передержке в растворе Щелочи. МасШтаб 2 мкм. Микроскопы Zeiss MERLIN (А), Zeiss EVO 40 (В), напыление хромом (А), Золотом (В).
РИС. 7. НедостаточнаЯ промывка раковин глохидиев после очиЩениЯ в Щелочи (5% КОН). А, С. «Замыленность» пор наружной поверхности створок (Cristaria tuberculata, оЗ. Ханка, Приморский кр.). B. Остаток Щелочи, выпавШий кристаллами на поверхности личинки (Unio dembeae, р. Дуко, ЭфиопиЯ). D. Капли раствора Щелочи (укаЗаны стрелками) на поверхности Шипов крючка (Nodularia douglasiae, р. Гион, о-в Хонсю, ЯпониЯ). МасШтаб 5 мкм (А, С), 2 мкм (B, D). Микроскоп Zeiss MERLIN, напыление углеродом (А, В), хромом (С, D). FIG. 7. Insufficient rinsing of glochidia after cleaning in alkali (5% KOH). A, C. «Blurredness» of the exterior valve pores (Cristaria tuberculata, Khanka Lake, Primorsky Krai). B. Precipitation of alkali crystals on the exterior glochidia surface (Unio dembeae, Duko River, Ethiopia). D. Drops of alkali (indicated by arrows) on the hook spines (Nodularia douglasiae, Gion River, Honshu Island, Japan). Scale bars 5 μm (A, C), 2 μm (B, D). Zeiss MERLIN microscope, sputter coating with carbon (A, B) and chromium (C, D). in Методика подготовки раковин глохидиев (Bivalvia, Unionidae) длЯ работы на сканируюЩем Электронном микроскопе
РИС. 7. НедостаточнаЯ промывка раковин глохидиев после очиЩениЯ в Щелочи (5% КОН). А, С. «Замыленность» пор наружной поверхности створок (Cristaria tuberculata, оЗ. Ханка, Приморский кр.). B. Остаток Щелочи, выпавШий кристаллами на поверхности личинки (Unio dembeae, р. Дуко, ЭфиопиЯ). D. Капли раствора Щелочи (укаЗаны стрелками) на поверхности Шипов крючка (Nodularia douglasiae, р. Гион, о-в Хонсю, ЯпониЯ). МасШтаб 5 мкм (А, С), 2 мкм (B, D). Микроскоп Zeiss MERLIN, напыление углеродом (А, В), хромом (С, D). FIG. 7. Insufficient rinsing of glochidia after cleaning in alkali (5% KOH). A, C. «Blurredness» of the exterior valve pores (Cristaria tuberculata, Khanka Lake, Primorsky Krai). B. Precipitation of alkali crystals on the exterior glochidia surface (Unio dembeae, Duko River, Ethiopia). D. Drops of alkali (indicated by arrows) on the hook spines (Nodularia douglasiae, Gion River, Honshu Island, Japan). Scale bars 5 μm (A, C), 2 μm (B, D). Zeiss MERLIN microscope, sputter coating with carbon (A, B) and chromium (C, D).
РИС. 10. НаружнаЯ микроскульптура раковин глохидиев при напылении раЗными материалами. А. Углеродом (Kunashiria haconensis, оЗ. Песчаное, о-в КунаШир, Курильские о-ва). В. Хромом (Kunashiria haconensis, оЗ. Песчаное, о-в КунаШир, Курильские о-ва). C. Хромом (Anodonta cygnea, оЗ. Хамржицкое, ПольШа). D. Золотом (Anodonta cygnea, оЗ. Хамржицкое, ПольШа). МасШтабнаЯ линейка 2 мкм. Микроскопы Zeiss EVO 40 (А, С), Zeiss MERLIN (В, D). FIG. 10. External glochidia microsculpture with different material coating. A. Carbon coated (Kunashiria haconensis, Peschanoe Lake, Kunashir Island, Kuril Islands). B. Chromium coated (Kunashiria haconensis, Peschanoe Lake, Kunashir Island, Kuril Islands). C. Chromium coated (Anodonta cygnea, Khamrzhitskoe Lake, Poland). D. Gold coated (Anodonta cygnea, Khamrzhitskoe Lake, Poland). Scale bars 2 μm. Zeiss EVO 40 (A, C) and Zeiss MERLIN (B, D) microscopes. in Методика подготовки раковин глохидиев (Bivalvia, Unionidae) длЯ работы на сканируюЩем Электронном микроскопе
РИС. 10. НаружнаЯ микроскульптура раковин глохидиев при напылении раЗными материалами. А. Углеродом (Kunashiria haconensis, оЗ. Песчаное, о-в КунаШир, Курильские о-ва). В. Хромом (Kunashiria haconensis, оЗ. Песчаное, о-в КунаШир, Курильские о-ва). C. Хромом (Anodonta cygnea, оЗ. Хамржицкое, ПольШа). D. Золотом (Anodonta cygnea, оЗ. Хамржицкое, ПольШа). МасШтабнаЯ линейка 2 мкм. Микроскопы Zeiss EVO 40 (А, С), Zeiss MERLIN (В, D). FIG. 10. External glochidia microsculpture with different material coating. A. Carbon coated (Kunashiria haconensis, Peschanoe Lake, Kunashir Island, Kuril Islands). B. Chromium coated (Kunashiria haconensis, Peschanoe Lake, Kunashir Island, Kuril Islands). C. Chromium coated (Anodonta cygnea, Khamrzhitskoe Lake, Poland). D. Gold coated (Anodonta cygnea, Khamrzhitskoe Lake, Poland). Scale bars 2 μm. Zeiss EVO 40 (A, C) and Zeiss MERLIN (B, D) microscopes.
РИС. 4. НаружнаЯ микроскульптура глохидиев при раЗных условиЯх очистки раковин (Inversiunio yanagawensis, р. Гион, о-в Хонсю, ЯпониЯ) в растворе Щелочи. А. НеповрежденнаЯ микроскульптура. B. ПоврежденнаЯ при передержке в растворе Щелочи. МасШтаб 2 мкм. Микроскопы Zeiss MERLIN (А), Zeiss EVO 40 (В), напыление хромом (А), Золотом (В). FIG. 4. Exterior valve microsculpture under different conditions of cleaning in alkali (Inversiunio yanagawensis, Gion River, Honshu Island, Japan). A. Undamaged microsculpture. B. Damaged microsculpture by excessive treatment in alkali. Scale bars 2 μm. Zeiss MERLIN (A) and Zeiss EVO 40 (B) microscopes, sputter coating with chromium (A) and gold (B). in Методика подготовки раковин глохидиев (Bivalvia, Unionidae) длЯ работы на сканируюЩем Электронном микроскопе
РИС. 4. НаружнаЯ микроскульптура глохидиев при раЗных условиЯх очистки раковин (Inversiunio yanagawensis, р. Гион, о-в Хонсю, ЯпониЯ) в растворе Щелочи. А. НеповрежденнаЯ микроскульптура. B. ПоврежденнаЯ при передержке в растворе Щелочи. МасШтаб 2 мкм. Микроскопы Zeiss MERLIN (А), Zeiss EVO 40 (В), напыление хромом (А), Золотом (В). FIG. 4. Exterior valve microsculpture under different conditions of cleaning in alkali (Inversiunio yanagawensis, Gion River, Honshu Island, Japan). A. Undamaged microsculpture. B. Damaged microsculpture by excessive treatment in alkali. Scale bars 2 μm. Zeiss MERLIN (A) and Zeiss EVO 40 (B) microscopes, sputter coating with chromium (A) and gold (B).
РИС. 8. Примеры проблем с иЗображением при работе на СЭМ. А, В. Засветка раЗличных частей раковин глохидиев (А. Anodonta anatina (=Colletopterum), оЗ. Красное, ХакасиЯ. В. Inversiunio reinianus, оЗ. Бива, о-в Хонсю, ЯпониЯ). C. РаЗнаЯ скорость сканированиЯ (слева – очень быстраЯ, справа – медленнаЯ) наружной поверхности глохидиЯ (Anodonta cygnea, р. Ялма, МосковскаЯ обл.). D. Артефакты в виде гориЗонтальных полос вследствие накоплениЯ отрицательного ЗарЯда при недостаточном напылении внутренней поверхности глохидиЯ (Nodularia douglasiae, ПетровскаЯ протока, бассейн р. Амур, Хабаровский кр.). МасШтаб 50 мкм (А, В), 2 мкм (С), 5 мкм (D). Микроскопы Zeiss EVO 40 (А, С, D), Zeiss MERLIN (В), напыление углеродом (А, С), хромом (В, D). FIG. 8. Illustration of different problems with SEM images. A, B. Overall illumination of some glochidia shells parts (A. Anodonta anatina (= Colletopterum), Krasnoe Lake, Khakassia. B. Inversiunio reinianus, Biwa Lake, Honshu Island, Japan). C. Different scanning speed (faster on the left and slower on the right) of the exterior glochidia valve (Anodonta cygnea, Yalma River, Moscow Oblast). D. Artifacts as horizontal stripes because of additional accumulation of a negative charge due to insufficient coating of the interior glochidia valve (Nodularia douglasiae, Petrovskaya channel, Amur River basin, Khabarovsk Krai). Scale bars 50 μm (A, B), 2 μm (C), 5 μm (D). Zeiss EVO 40 (A, C, D) and Zeiss MERLIN (B) microscopes, sputter coating with carbon (A, C) and chromium (B, D). in Методика подготовки раковин глохидиев (Bivalvia, Unionidae) длЯ работы на сканируюЩем Электронном микроскопе
РИС. 8. Примеры проблем с иЗображением при работе на СЭМ. А, В. Засветка раЗличных частей раковин глохидиев (А. Anodonta anatina (=Colletopterum), оЗ. Красное, ХакасиЯ. В. Inversiunio reinianus, оЗ. Бива, о-в Хонсю, ЯпониЯ). C. РаЗнаЯ скорость сканированиЯ (слева – очень быстраЯ, справа – медленнаЯ) наружной поверхности глохидиЯ (Anodonta cygnea, р. Ялма, МосковскаЯ обл.). D. Артефакты в виде гориЗонтальных полос вследствие накоплениЯ отрицательного ЗарЯда при недостаточном напылении внутренней поверхности глохидиЯ (Nodularia douglasiae, ПетровскаЯ протока, бассейн р. Амур, Хабаровский кр.). МасШтаб 50 мкм (А, В), 2 мкм (С), 5 мкм (D). Микроскопы Zeiss EVO 40 (А, С, D), Zeiss MERLIN (В), напыление углеродом (А, С), хромом (В, D). FIG. 8. Illustration of different problems with SEM images. A, B. Overall illumination of some glochidia shells parts (A. Anodonta anatina (= Colletopterum), Krasnoe Lake, Khakassia. B. Inversiunio reinianus, Biwa Lake, Honshu Island, Japan). C. Different scanning speed (faster on the left and slower on the right) of the exterior glochidia valve (Anodonta cygnea, Yalma River, Moscow Oblast). D. Artifacts as horizontal stripes because of additional accumulation of a negative charge due to insufficient coating of the interior glochidia valve (Nodularia douglasiae, Petrovskaya channel, Amur River basin, Khabarovsk Krai). Scale bars 50 μm (A, B), 2 μm (C), 5 μm (D). Zeiss EVO 40 (A, C, D) and Zeiss MERLIN (B) microscopes, sputter coating with carbon (A, C) and chromium (B, D).
РИС. 5. ЗагрЯЗнение готовых обраЗцов длЯ СЭМ при длительном хранении в негерметичных условиЯх (A–C) либо при хранении проШедШих процедуру мацерированиЯ беЗ последуюЩего обеЗЗараживаниЯ (D, E). A–С. Бактерии на поверхности глохидиев (Nodularia douglasiae, р. ИлистаЯ, бассейн оЗ. Ханка, Приморский кр.). А. ВнеШний вид глохидиЯ, основное ЗагрЯЗнение на створке в верхней части фото. В. Крючок глохидиЯ, основное ЗагрЯЗнение в левой части фото. С. Створка, вид иЗнутри. D. Единичные бактерии на створке глохидиЯ, вид иЗнутри (Kunashiria japonica, оЗ. Утиное, о-в Зелёный, Курильские о-ва). E. Гифы гриба на створке глохидиЯ, вид на наружную пору (Beringiana beringiana, оЗ. АЗабачье, Камчатка). МасШтаб 50 мкм (А, C), 10 мкм (В, D), 1 мкм (Е). Микроскопы Zeiss MERLIN (А, B, C, E), Zeiss EVO 40 (D), напыление хромом (А–С), Золотом (D), углеродом (Е). FIG. 5. Contamination of the SEM ready-made samples during long-term storage under unsealed conditions (A–C) or during storage the samples that have passed the maceration procedure without subsequent disinfection (D, E). A–C. Bacteria on the glochidia surface (Nodularia douglasiae, Ilistaya River, Khanka Lake basin, Primorsky Krai). A. Glochidium with the main pollution on the valve in the upper part of the photo. B. Hook with the main pollution on the left side of the photo. C. Interior valve. D. Bacteria on the interior valve (Kunashiria japonica, Utinoe Lake, Zeliony Island, Kuril Islands). E. Fungal hyphae on the pore of exterior valve (Beringiana beringiana, Azabachye Lake, Kamchatka). Scale bars 50 μm (A, C), 10 μm (B, D), 1 μm (E). Zeiss MERLIN (A, B, C, E) and Zeiss EVO 40 (D) microscopes, sputter coating with chromium (A–C), gold (D), and carbon (E). in Методика подготовки раковин глохидиев (Bivalvia, Unionidae) длЯ работы на сканируюЩем Электронном микроскопе
РИС. 5. ЗагрЯЗнение готовых обраЗцов длЯ СЭМ при длительном хранении в негерметичных условиЯх (A–C) либо при хранении проШедШих процедуру мацерированиЯ беЗ последуюЩего обеЗЗараживаниЯ (D, E). A–С. Бактерии на поверхности глохидиев (Nodularia douglasiae, р. ИлистаЯ, бассейн оЗ. Ханка, Приморский кр.). А. ВнеШний вид глохидиЯ, основное ЗагрЯЗнение на створке в верхней части фото. В. Крючок глохидиЯ, основное ЗагрЯЗнение в левой части фото. С. Створка, вид иЗнутри. D. Единичные бактерии на створке глохидиЯ, вид иЗнутри (Kunashiria japonica, оЗ. Утиное, о-в Зелёный, Курильские о-ва). E. Гифы гриба на створке глохидиЯ, вид на наружную пору (Beringiana beringiana, оЗ. АЗабачье, Камчатка). МасШтаб 50 мкм (А, C), 10 мкм (В, D), 1 мкм (Е). Микроскопы Zeiss MERLIN (А, B, C, E), Zeiss EVO 40 (D), напыление хромом (А–С), Золотом (D), углеродом (Е). FIG. 5. Contamination of the SEM ready-made samples during long-term storage under unsealed conditions (A–C) or during storage the samples that have passed the maceration procedure without subsequent disinfection (D, E). A–C. Bacteria on the glochidia surface (Nodularia douglasiae, Ilistaya River, Khanka Lake basin, Primorsky Krai). A. Glochidium with the main pollution on the valve in the upper part of the photo. B. Hook with the main pollution on the left side of the photo. C. Interior valve. D. Bacteria on the interior valve (Kunashiria japonica, Utinoe Lake, Zeliony Island, Kuril Islands). E. Fungal hyphae on the pore of exterior valve (Beringiana beringiana, Azabachye Lake, Kamchatka). Scale bars 50 μm (A, C), 10 μm (B, D), 1 μm (E). Zeiss MERLIN (A, B, C, E) and Zeiss EVO 40 (D) microscopes, sputter coating with chromium (A–C), gold (D), and carbon (E).
MERLIN H2020 Project: Promotional Video
<p>MERLIN: Helping today's researchers create tomorrow's enterprises</p> <p>Many breakthrough discoveries fruit of research programmes often fail to realize their potential as an innovation, that is, bringing to market an idea or process.</p> <p>MERLIN will support market-oriented researchers, SMEs and startups across Europe, to consider the full potential of their research and to shape ideas and outputs into innovations to be ready for market validation and commercialisation, by using modern needs-first, market-led methodologies and offering free training workshops and meetup in 7 European countries.</p> <p>Check our website to stay updated <a href="https://www.youtube.com/redirect?event=video_description&v=lqeYWrm4swM&redir_token=Pi1gRtpcbFbP_6TasJfwceKrEYp8MTUyNjQ4NjI2MEAxNTI2Mzk5ODYw&q=https%3A%2F%2Fmerlin-ict.eu">https://merlin-ict.eu</a> We are ready for you at MERLIN.</p> <p>MERLIN has received funding from the European Union’s Horizon 2020 research and innovation programme under grant agreement No 780460</p>
e-MERLIN images in Kool et al. 2023 A radio-detected thermonuclear supernova from a single-degenerate progenitor with a helium star donor
<p>Fits images obtained with e-MERLIN on Nov 19 2021 and April 6-11 2022 on SN2020eyj. Results are published in Kool et al. 2023 "A radio-detected thermonuclear supernova from a single-degenerate progenitor with a helium star donor".</p> <p>Project RR12002<br> Target name: 1111+2923<br> Original observation correlation centre: 11:11:47.180000 +29.23.06.36000<br> Run code: RR12002_C_001_20211119</p> <p>Project RR13005<br> Target name: 1111+2923<br> Original observation correlation centre: 11:11:43.271400 +29.23.37.83200<br> Run codes (combined):<br> RR13005_C_001_20220406<br> RR13005_C_002_20220407<br> RR13005_C_003_20220408<br> RR13005_C_004_20220409<br> RR13005_C_005_20220410<br> RR13005_C_006_20220411</p> <p> </p>
MERLIN H2020 Project: Video of Faces of MERLIN; Dr Jessica Ocampos (Camnexus)
<p>Video of Faces of MERLIN_ Dr Jessica Ocampos (Camnexus), 2019</p>
MERLIN H2020 Project: Video of Faces of MERLIN: Dr Cristina Berges
<p>Video of Faces of MERLIN: Dr Cristina Berges, 2019</p>
MERLIN H2020 Project: Video of Faces of MERLIN; Dr. Wojciech Józefowicz (medVC)
<p>Project: Video of Faces of MERLIN; Dr. Wojciech Józefowicz (medVC), 2019</p>
Merlin Engine
This Rolls Royce Merlin engine from a crashed World War 2 Hurricane aircraft and is now located in the Battle of Britain Bunker Visitor Centre, Uxbridge. The plane was piloted by Peter Beverley Robinson and was shot down in June 1940 near Dieppe, France. The pilot survived and went on to fight in the Battle of Britain. 218 photos taken in August 2021 with a Sony a7R III and processed in Reality Capture. Source: Objaverse 1.0 / Sketchfab
Merlin- Window-5
Merlin or Doughiske Castle has a series of exquisitely decorated medieval windows. The carvings depict foliage and knotwork, with one windows showing a figure hanging from a round arched window. This has been identified as Ireland's smallest Sheela-na-Gig. The carvings largely function as decoration and may have been designed by the masons who carved them with little input from the castle owner. They may form a protective function on the building Source: Objaverse 1.0 / Sketchfab
ScienceDex guides
Understand access before you commit
These curated guides explain access requirements, typical timelines, costs, and reuse considerations for widely used research datasets.
Allen Brain Atlas
Allen Brain Atlas is an Allen Institute collection of brain map atlases, datasets, APIs, and analysis tools covering mouse, human, and non-human primate brain resources.
Annotated Behaviour and Observability Dataset (ABODe)
ABODe is a University of Edinburgh DataShare dataset for behavior classification in group-housed mice using home-cage video, identities, bounding boxes, ground-plate positions, and annotator labels.
DANDI Archive for NWB datasets
DANDI is a BRAIN Initiative archive for publishing and sharing neurophysiology data, including electrophysiology, optophysiology, and behavioral data packaged as NWB and related standards.
International Brain Laboratory public data
The International Brain Laboratory public data releases expose standardized mouse decision-making experiments, including Neuropixels recordings, widefield calcium imaging, behavior, and session metadata accessed through the ONE API.
OpenNeuro
OpenNeuro is a free, open platform for sharing neuroimaging datasets, with public search, dataset pages, and download paths for web, S3, DataLad, and the OpenNeuro CLI.