Find research datasets worth reusing
Search datasets from major research repositories and use ShareScore to quickly assess how well each record supports discovery, access, and reuse.
24
datasets available to search
ShareScore release 0.9.0
Dataset results
24 results for “Sinanodonta”
FIG. 3 in DNA barcoding revealed the presence of the invasive freshwater mussel Sinanodonta aff. woodiana (Lea, 1834) in Afghanistan
FIG. 3. — The Bayesian phylogenetic tree on the basis of 37 unique COI sequences of Sinanodonta sp. and related taxa, including one new sequence from Afghanistan (red) and 36 sequences from GenBank. Margaritifera laosensis (I. Lea, 1863) and M. dahurica (Middendorff, 1850) are the outgroups. The numbers above branches show the bootstrap support value. The scale bar represent the branch lengths.
FIG. 2 in DNA barcoding revealed the presence of the invasive freshwater mussel Sinanodonta aff. woodiana (Lea, 1834) in Afghanistan
FIG. 2. — Non-indigenous Sinanodonta aff. woodiana (Lea, 1834) in Afghanistan: A, live samples of the mussels settled in the river, Qala-I-Zal (10 August 2020); B, shell exterior view of the mussels: a, b and c represent very small, small and medium size classes, respectively.
РИС. 9. ВнеШний вид раковин глохидиев (Sinanodonta woodiana, р. Одра, ПольШа), очиЩенных с помоЩью Щелочи (5% KOH). A. Темные пЯтна на поверхности, свидетельствуюЩие о недостаточной промывке после Щелочи. B. ХороШо очиЩеннаЯ и правильно промытаЯ раковина. МасШтаб 50 мкм. Микроскоп Zeiss EVO 40, напыление Золотом. in Методика подготовки раковин глохидиев (Bivalvia, Unionidae) длЯ работы на сканируюЩем Электронном микроскопе
РИС. 9. ВнеШний вид раковин глохидиев (Sinanodonta woodiana, р. Одра, ПольШа), очиЩенных с помоЩью Щелочи (5% KOH). A. Темные пЯтна на поверхности, свидетельствуюЩие о недостаточной промывке после Щелочи. B. ХороШо очиЩеннаЯ и правильно промытаЯ раковина. МасШтаб 50 мкм. Микроскоп Zeiss EVO 40, напыление Золотом.
РИС. 3. Примеры дефектов глохидиев при работе на СЭМ. A, B. НаружнаЯ поверхность раковины глохидиЯ беЗ верхнего слоЯ, раЗруШенного иЗ-За долгой очистки в растворе Щелочи (Anodonta anatina (=Colletopterum), р. Обь, НовосибирскаЯ обл.). C. ТреЩины на раковине глохидиЯ вследствие иЗлиШнего высуШиваниЯ перед напылением (Middendorffinaia mongolica, р. Артёмовка, Приморский кр.). D. ПоврежденнаЯ микроскульптура наружного слоЯ глохидиЯ иЗ-За недостаточного обеЗвоживаниЯ перед напылением (Anodonta anatina, р. Москва). E. «Замыленность» микроскульпуры наружной поверхности глохидиЯ иЗ-За напылениЯ на недостаточно просуШенные раковины (Sinanodonta schrenkii, р. ИлистаЯ, бассейн оЗ. Ханка, Приморский кр.). F. Поврежденный, сморЩенный наружный слой раковины глохидиЯ иЗ-За пересуШиваниЯ перед напылением (Kunashiria japonica, оЗ. Чухуненко, Приморский кр.). МасШтаб 1 мкм (A, B), 5 мкм (C), 10 мкм (D, E, F). Микроскопы Zeiss MERLIN (A–D), Zeiss EVO 40 (E, F), напыление хромом (А–Е), углеродом (F). in Методика подготовки раковин глохидиев (Bivalvia, Unionidae) длЯ работы на сканируюЩем Электронном микроскопе
РИС. 3. Примеры дефектов глохидиев при работе на СЭМ. A, B. НаружнаЯ поверхность раковины глохидиЯ беЗ верхнего слоЯ, раЗруШенного иЗ-За долгой очистки в растворе Щелочи (Anodonta anatina (=Colletopterum), р. Обь, НовосибирскаЯ обл.). C. ТреЩины на раковине глохидиЯ вследствие иЗлиШнего высуШиваниЯ перед напылением (Middendorffinaia mongolica, р. Артёмовка, Приморский кр.). D. ПоврежденнаЯ микроскульптура наружного слоЯ глохидиЯ иЗ-За недостаточного обеЗвоживаниЯ перед напылением (Anodonta anatina, р. Москва). E. «Замыленность» микроскульпуры наружной поверхности глохидиЯ иЗ-За напылениЯ на недостаточно просуШенные раковины (Sinanodonta schrenkii, р. ИлистаЯ, бассейн оЗ. Ханка, Приморский кр.). F. Поврежденный, сморЩенный наружный слой раковины глохидиЯ иЗ-За пересуШиваниЯ перед напылением (Kunashiria japonica, оЗ. Чухуненко, Приморский кр.). МасШтаб 1 мкм (A, B), 5 мкм (C), 10 мкм (D, E, F). Микроскопы Zeiss MERLIN (A–D), Zeiss EVO 40 (E, F), напыление хромом (А–Е), углеродом (F).
РИС. 2. Сравнение наружной микроскульпуры глохидиев при длительной фиксации 75% Этанолом (А) и 10% формалином (В). А. Sinanodonta schrenkii (р. РаЗдольнаЯ, Приморский кр., сбор VI.1999). B. Sinanodonta calipygos (окрестности Киото, о-в Хонсю, ЯпониЯ, сбор V.1982). МасШтаб 2 мкм. Микроскоп Zeiss EVO 40, напыление хромом. in Методика подготовки раковин глохидиев (Bivalvia, Unionidae) длЯ работы на сканируюЩем Электронном микроскопе
РИС. 2. Сравнение наружной микроскульпуры глохидиев при длительной фиксации 75% Этанолом (А) и 10% формалином (В). А. Sinanodonta schrenkii (р. РаЗдольнаЯ, Приморский кр., сбор VI.1999). B. Sinanodonta calipygos (окрестности Киото, о-в Хонсю, ЯпониЯ, сбор V.1982). МасШтаб 2 мкм. Микроскоп Zeiss EVO 40, напыление хромом.
РИС. 9. ВнеШний вид раковин глохидиев (Sinanodonta woodiana, р. Одра, ПольШа), очиЩенных с помоЩью Щелочи (5% KOH). A. Темные пЯтна на поверхности, свидетельствуюЩие о недостаточной промывке после Щелочи. B. ХороШо очиЩеннаЯ и правильно промытаЯ раковина. МасШтаб 50 мкм. Микроскоп Zeiss EVO 40, напыление Золотом. FIG. 9. Glochidia shells (Sinanodonta woodiana, Odra River, Poland) cleaned in alkali (5% KOH). A. Dark spots on the shell surface, indicating insufficient rinsing after alkali. B. Properly cleaned and rinsed shell. Scale bars 50 μm. Zeiss EVO 40 microscope, sputter coating with gold. in Методика подготовки раковин глохидиев (Bivalvia, Unionidae) длЯ работы на сканируюЩем Электронном микроскопе
РИС. 9. ВнеШний вид раковин глохидиев (Sinanodonta woodiana, р. Одра, ПольШа), очиЩенных с помоЩью Щелочи (5% KOH). A. Темные пЯтна на поверхности, свидетельствуюЩие о недостаточной промывке после Щелочи. B. ХороШо очиЩеннаЯ и правильно промытаЯ раковина. МасШтаб 50 мкм. Микроскоп Zeiss EVO 40, напыление Золотом. FIG. 9. Glochidia shells (Sinanodonta woodiana, Odra River, Poland) cleaned in alkali (5% KOH). A. Dark spots on the shell surface, indicating insufficient rinsing after alkali. B. Properly cleaned and rinsed shell. Scale bars 50 μm. Zeiss EVO 40 microscope, sputter coating with gold.
Figure 3 in Phylogeographic affinities, distribution and population status of the non-native Asian pond mussels Sinanodonta lauta and S. woodiana in Kazakhstan
Figure 3. Shells of Sinanodonta lauta and the temperate invasive lineage of S. woodiana from Kazakhstan. A-C) S. lauta, irrigation channel of the Ili River near Topar settlement [specimens RMBH biv764_7, RMBH biv763_1, and RMBH biv763_5, respectively]. D-F) Temperate invasive lineage of S. woodiana, Kapchagay Reservoir [specimens RMBH biv762_3, RMBH biv762_5, and RMBH biv762_2, respectively]. Scale bar = 20 mm. (Photo: Ekaterina Konopleva).
Figure 4 in Phylogeographic affinities, distribution and population status of the non-native Asian pond mussels Sinanodonta lauta and S. woodiana in Kazakhstan
Figure 4. Shell morphometry and age of Sinanodonta lauta (N = 20) and the temperate invasive lineage of S. woodiana (N = 10) from Kazakhstan. A) Shell length vs shell height scatterplot. B) Shell length vs shell width scatterplot. C) Shell length vs age scatterplot. D) Shell elongation index vs shell convexity index scatterplot.
Figure 2 in Phylogeographic affinities, distribution and population status of the non-native Asian pond mussels Sinanodonta lauta and S. woodiana in Kazakhstan
Figure 2. Habitat of a viable population of Sinanodonta lauta in Kazakhstan: irrigation channel of the Ili River near Topar settlement. (Photo: Ilya Vikhrev).
Figure 1 in Phylogeographic affinities, distribution and population status of the non-native Asian pond mussels Sinanodonta lauta and S. woodiana in Kazakhstan
Figure 1. Ranges and population status of Sinanodonta lauta and the temperate invasive lineage of S. woodiana in Middle Asia. The circles indicate recent well-established populations, and the squares indicate old unconfirmed records of S. lauta (green) and S. woodiana (red). The green star indicates the site of putative initial introduction of S. lauta to Kazakhstan between 1961 and 1971. The color filling indicates freshwater basins, in which non-native populations of S. lauta and S. woodiana (light green) and S. woodiana (pink) were established. The species occurrence data are presented in Table 1.
Figure 5 in Phylogeographic affinities, distribution and population status of the non-native Asian pond mussels Sinanodonta lauta and S. woodiana in Kazakhstan
Figure 5. Median joining networks of the COI sequences of Sinanodonta spp. The list of sequences is given in Table 2. The red numbers near branches indicate the numbers of nucleotide substitutions between haplotypes. Size of circles corresponds to the number of available sequences for each haplotype (smallest circle = 1 sequence). A) Temperate invasive lineage of Sinanodonta woodiana (N = 72). B) S. lauta (N = 24).
Figure 1 in First record of the occurrence of the Chinese pond mussel Sinanodonta woodiana (Lea, 1834) (Bivalvia: Unionidae) in African freshwaters: Oubeira Lake, Algeria
Figure 1. Location of Oubeira Lake in the boundaries of El-Kala National Park (modified from Sarri, 2017).
Figure 3 in First record of the occurrence of the Chinese pond mussel Sinanodonta woodiana (Lea, 1834) (Bivalvia: Unionidae) in African freshwaters: Oubeira Lake, Algeria
Figure 3. Scheme of measurements for S. woodiana from Oubeira Lake (photos by Bensaâd-Bendjedid L.): shell's length (SL), height (SH), and width (SW).
Figure 1 in First record of Sinanodonta woodiana and report for freshwater bivalves from Iraq (Mollusca: Bivalvia: Unionidae)
Figure 1. Sinanodonta woodiana from Iraq. (a) Right valve of a live specimen with a total shell length 14 cm and shell height 8 cm. (b) Dorsal view of specimen with the umbo sculpture composed of parallel bars, characteristic of Sinanodonta woodiana. Total shell length was 14 cm. (Photos: Dr. Al- Fanharawi).
Linked collectors and determiners for: DNA analysis of a non-native lineage of Sinanodonta woodiana species complex (Bivalvia: Unionidae) from Middle Asia supports the Chinese origin of the European invaders.
Natural history specimen data linked to collectors and determiners held within, "DNA analysis of a non-native lineage of Sinanodonta woodiana species complex (Bivalvia: Unionidae) from Middle Asia supports the Chinese origin of the European invaders". Claims or attributions were made on Bionomia by volunteer Scribes, <a href="https://bionomia.net/dataset/86a42a54-2f47-458e-a443-13866e9e3191">https://bionomia.net/dataset/86a42a54-2f47-458e-a443-13866e9e3191</a> using specimen data from the dataset aggregated by the Global Biodiversity Information Facility, <a href="https://gbif.org/dataset/86a42a54-2f47-458e-a443-13866e9e3191">https://gbif.org/dataset/86a42a54-2f47-458e-a443-13866e9e3191</a>. Formatted as a Frictionless Data package.
Figure 2 in First record of Sinanodonta woodiana and report for freshwater bivalves from Iraq (Mollusca: Bivalvia: Unionidae)
Figure 2. Map of the collection site and Hilla River.
FIGURE 3 in DNA analysis of a non-native lineage of Sinanodonta woodiana species complex (Bivalvia: Unionidae) from Middle Asia supports the Chinese origin of the European invaders
FIGURE 3. Shell of a specimen of Sinanodonta cf. gibba (Benson in Cantor, 1842) from the Amu Darya River. Scale bar = 3 cm. (Photo: Ekaterina Konopleva).
FIGURE 5 in DNA analysis of a non-native lineage of Sinanodonta woodiana species complex (Bivalvia: Unionidae) from Middle Asia supports the Chinese origin of the European invaders
FIGURE 5. Majority-rule consensus Bayesian phylogenetic tree based on the COI haplotypes of Sinanodonta spp. and related taxa. Numbers close to nodes are Bayesian posterior probabilities. The scale bar indicates the branch length.
FIGURE 4 in DNA analysis of a non-native lineage of Sinanodonta woodiana species complex (Bivalvia: Unionidae) from Middle Asia supports the Chinese origin of the European invaders
FIGURE 4. Median-joining network of the COI sequences of Sinanodonta cf. gibba (Benson in Cantor, 1842) (N = 53; list of additional sequences in Appendix 1). The red numbers near branches indicate the numbers of nucleotide substitutions between haplotypes. Size of circles corresponds to the number of available sequences for each haplotype (smallest circle = 1 sequence).
FIGURE 2 in DNA analysis of a non-native lineage of Sinanodonta woodiana species complex (Bivalvia: Unionidae) from Middle Asia supports the Chinese origin of the European invaders
FIGURE 2. Habitat of Sinanodonta cf. gibba (Benson in Cantor, 1842) from Uzbekistan: a floodplain lake of the Amu Darya River near the town of Xonqa. (Photo: Alexey Chernyak).
ScienceDex guides
Understand access before you commit
These curated guides explain access requirements, typical timelines, costs, and reuse considerations for widely used research datasets.
Allen Brain Atlas
Allen Brain Atlas is an Allen Institute collection of brain map atlases, datasets, APIs, and analysis tools covering mouse, human, and non-human primate brain resources.
Annotated Behaviour and Observability Dataset (ABODe)
ABODe is a University of Edinburgh DataShare dataset for behavior classification in group-housed mice using home-cage video, identities, bounding boxes, ground-plate positions, and annotator labels.
DANDI Archive for NWB datasets
DANDI is a BRAIN Initiative archive for publishing and sharing neurophysiology data, including electrophysiology, optophysiology, and behavioral data packaged as NWB and related standards.
International Brain Laboratory public data
The International Brain Laboratory public data releases expose standardized mouse decision-making experiments, including Neuropixels recordings, widefield calcium imaging, behavior, and session metadata accessed through the ONE API.
OpenNeuro
OpenNeuro is a free, open platform for sharing neuroimaging datasets, with public search, dataset pages, and download paths for web, S3, DataLad, and the OpenNeuro CLI.