Find research datasets worth reusing

Fig. 31 in Review of the Canadian Eustrophinae (Coleoptera, Tetratomidae)

Fig. 31. Canadian distribution of Synstrophus repandus. Inset shows US distribution, by state. Open circle indicates state record from Hatch (1965).

Figs 17-25 in Review of the Canadian Eustrophinae (Coleoptera, Tetratomidae)

Figs 17-25. Antennae of Canadian eustrophines. Fig. 17. Pseudoholostrophus impressicollis; Fig. 18. Pseudoholostrophus discolor; Fig. 19. Holostrophus bifasciatus; Fig. 20. Eustrophus tomentosus; Fig. 21. Eustrophopsis bicolor; Fig. 22. Eustrophopsis confinis; Fig. 23. Synstrophus repandus; Fig. 24. E. tomentosus, antennomeres 9-11 (sensillar field indicated by stippling); Fig. 25. S. repandus, antennomeres 9-11 (sensillar field indicated by stippling). Scale bar = 0.25 mm (Figs. 17-23); 0.1 mm (Figs. 24-25).

Figs 8-16 in Review of the Canadian Eustrophinae (Coleoptera, Tetratomidae)

Figs 8-16. Features of Canadian eustrophines. Figs. 8-14. Frontal view of head (same specimens as in Figs. 1-7). Fig. 8. Pseudoholostrophus impressicollis; Fig. 9. Pseudoholostrophus discolor; Fig. 10. Holostrophus bifasciatus; Fig. 11. Eustrophus tomentosus; Fig. 12. Eustrophopsis bicolor; Fig. 13. Eustrophopsis confinis; Fig. 14. Synstrophus repandus. Figs. 15-16. Hind tibia. Fig. 15. H. bifasciatus; Fig. 16. E. tomentosus.

Figs 1-7 in Review of the Canadian Eustrophinae (Coleoptera, Tetratomidae)

Figs 1-7. Dorsal habitus of Canadian eustrophines. Fig. 1. Pseudoholostrophus impressicollis, TL = 4.3 mm; Fig. 2. Pseudoholostrophus discolor, TL = 4.8 mm; Fig. 3. Holostrophus bifasciatus, TL = 5.8 mm; Fig. 4. Eustrophus tomentosus, TL = 4.8 mm; Fig. 5. Eustrophopsis bicolor, TL = 5.6 mm; Fig. 6. Eustrophopsis confinis, TL = 5.4 mm; Fig. 7. Synstrophus repandus, TL = 6.8 mm.

opencc-zeroJan 2024View details →

Linked collectors and determiners for: Review of the Canadian Eustrophinae (Coleoptera, Tetratomidae).

Natural history specimen data linked to collectors and determiners held within, "Review of the Canadian Eustrophinae (Coleoptera, Tetratomidae)". Claims or attributions were made on Bionomia by volunteer Scribes, <a href="https://bionomia.net/dataset/423726f5-4886-413c-9aef-422348a3aae4">https://bionomia.net/dataset/423726f5-4886-413c-9aef-422348a3aae4</a> using specimen data from the dataset aggregated by the Global Biodiversity Information Facility, <a href="https://gbif.org/dataset/423726f5-4886-413c-9aef-422348a3aae4">https://gbif.org/dataset/423726f5-4886-413c-9aef-422348a3aae4</a>. Formatted as a Frictionless Data package.

opencc-zeroJan 2024View details →

Linked collectors and determiners for: Faunistic review of Tetratomidae and Melandryidae (Coleoptera: Tenebrionoidea) in Lithuania with an annotated checklist of the species.

Natural history specimen data linked to collectors and determiners held within, "Faunistic review of Tetratomidae and Melandryidae (Coleoptera: Tenebrionoidea) in Lithuania with an annotated checklist of the species". Claims or attributions were made on Bionomia by volunteer Scribes, <a href="https://bionomia.net/dataset/3f040435-a70c-49ec-ae9a-07df11b91f4a">https://bionomia.net/dataset/3f040435-a70c-49ec-ae9a-07df11b91f4a</a> using specimen data from the dataset aggregated by the Global Biodiversity Information Facility, <a href="https://gbif.org/dataset/3f040435-a70c-49ec-ae9a-07df11b91f4a">https://gbif.org/dataset/3f040435-a70c-49ec-ae9a-07df11b91f4a</a>. Formatted as a Frictionless Data package.

Figures 37–48 in Lectotype designations in Tetratomidae, Melandryidae, Boridae and Mycteridae, based on material in the Museum of Comparative Zoology, Harvard University (Coleoptera: Tenebrionoidea)

Figures 37–48. Dorsal and lateral habitus of newly designated lectotypes. 37–38. Orchesia gracilis Melsheimer, lectotype. 37) Dorsal habitus. 38) Lateral habitus. Scale lines = 2.0 mm. 39–40. Orchesia ornata Horn, lectotype. 39) Dorsal habitus. 40) Lateral habitus. Scale lines = 1.0 mm. 41–42. Amblyctis praeses LeConte, lectotype. 41) Dorsal habitus. 42) Lateral habitus. Scale lines = 5.0 mm. 43–44. Dircaea sericea Haldeman, female lectotype. 43) Dorsal habitus. 44) Lateral habitus. Scale lines = 2.0 mm. 45–46. Serropalpus obsoletus Haldeman, lectotype. 45) Dorsal habitus. 46) Lateral habitus. Scale lines = 5.0 mm. 47–48. Serropalpus substriatus Haldeman, lectotype. 47) Dorsal habitus. 48) Lateral habitus. Scale lines = 2.0 mm.

Figure 26–36 in Lectotype designations in Tetratomidae, Melandryidae, Boridae and Mycteridae, based on material in the Museum of Comparative Zoology, Harvard University (Coleoptera: Tenebrionoidea)

Figure 26–36. Dorsal and lateral habitus of newly designated lectotypes. 26. Melandrya striata var. bicolor Melsheimer, lectotype, lateral habitus. Scale line = 2.0 mm. 27–28. Melandrya striata var. thoracica Melsheimer, lectotype. 27) Dorsal habitus. 28) Lateral habitus. Scale lines = 5.0 mm. 29–30. Hypulus fulminans LeConte, lectotype. 29) Dorsal habitus. 30) Lateral habitus. Scale lines = 1.0 mm. 31–32. Microscapha arctica Horn, lectotype. 31) Dorsal habitus. 32) Lateral habitus. Scale lines = 0.5 mm. 33–34. Microscapha clavicornis LeConte, lectotype. 33) Dorsal habitus. 34) Lateral habitus. Scale lines = 1.0 mm. 35–36. Orchesia castanea Melsheimer, lectotype. 35) Dorsal habitus. 36) Lateral habitus. Scale lines = 2.0 mm.

Figure 14–25 in Lectotype designations in Tetratomidae, Melandryidae, Boridae and Mycteridae, based on material in the Museum of Comparative Zoology, Harvard University (Coleoptera: Tenebrionoidea)

Figure 14–25. Dorsal and lateral habitus of newly designated lectotypes. 14) Dircaea riversi LeConte, lectotype, lateral habitus. Scale line = 5.0 mm. 15–16. Hypulus trifasciatus Melsheimer, lectotype. 15) Dorsal habitus. 16) Lateral habitus. Scale lines = 2.0 mm. 17–18. Microtonus sericans LeConte, lectotype. 17) Dorsal habitus. 18) Lateral habitus. Scale lines = 1.0 mm. 19–20. Scraptia flavicollis Haldeman, lectotype. 19) Dorsal habitus. Scale line = 2.0 mm. 20) Lateral habitus. Scale line = 1.0 mm. 21–22. Scraptia rugosa Haldeman, lectotype. 21) Dorsal habitus. 22) Lateral habitus. Scale lines = 1.0 mm. 23–24. Melandrya maculata LeConte, male lectotype. 23) Dorsal habitus. 24) Lateral habitus. Scale lines = 2.0 mm. 25) Melandrya striata var. bicolor Melsheimer, lectotype, dorsal habitus.

Figures 49–58 in Lectotype designations in Tetratomidae, Melandryidae, Boridae and Mycteridae, based on material in the Museum of Comparative Zoology, Harvard University (Coleoptera: Tenebrionoidea)

Figures 49–58. Dorsal and lateral habitus of newly designated lectotypes. 49–50. Carebara longula LeConte, lectotype. 49) Dorsal habitus. 50) Lateral habitus. Scale lines = 2.0 mm. 51–52. Hallomenus quadripustulata Melsheimer, lectotype. 51) Dorsal habitus. 52) Lateral habitus. Scale lines = 1.0 mm. 53–54. Mycterus canescens Horn, male lectotype. 53) Dorsal habitus. 54) Lateral habitus. Scale lines = 2.0 mm. 55–56. Mycterus quadricollis Horn, male lectotype. 55) Dorsal habitus. 56) Lateral habitus. Scale lines = 2.0 mm. 57–58. Crymodes discicollis LeConte, lectotype. 57) Dorsal habitus. 58) Lateral habitus. Scale lines = 2.0 mm.

Figures 1–13 in Lectotype designations in Tetratomidae, Melandryidae, Boridae and Mycteridae, based on material in the Museum of Comparative Zoology, Harvard University (Coleoptera: Tenebrionoidea)

Figures 1–13. Dorsal and lateral habitus of newly designated lectotypes. 1–2. Hallomenus scapularis Melsheimer, lectotype. 1) Dorsal habitus. 2) Lateral habitus. Scale lines = 2.0 mm. 3–4. Hallomenus serricornis LeConte, lectotype. 3) Dorsal habitus. 4) Lateral habitus. Scale lines = 2.0 mm. 5–6. Hypulus bicinctus Horn, lectotype. 5) Dorsal habitus. 6) Lateral habitus. Scale lines = 2.0 mm. 7–8. Dircaea liturata LeConte, male lectotype. 7) Dorsal habitus. 8) Lateral habitus. Scale lines = 2.0 mm. 9–10. Dircaea fusca LeConte, female lectotype. 9) Dorsal habitus. 10) Lateral habitus. Scale lines = 2.0 mm. 11–12. Dircaea prona LeConte, male lectotype. 11) Dorsal habitus. 12) Lateral habitus. Scale lines = 5.0 mm. 13). Dircaea riversi LeConte, female lectotype, dorsal habitus. Scale line = 5.0 mm.

opencc-by-4.0May 2020View details →

Un mâle (Fig. 1a) et une femelle ont ainsi été capturés au moyen de deux pièges d'interception (selon le modèle de Brustel 2012). Le premier piège était suspendu sur un chêne mort sur pied dans une chênaie thermophile de plaine, à une altitude de 499 m (Fig. 1b). Outre cette découverte, ce piège a permis de mettre en évidence d'autres espèces rares telles Clytus tropicus (Panzer, 1795) (Cerambycidae) et Camptorhinus simplex Seidlitz, 1867 (Curculionidae). Le second piège, situé à près de 5 km du premier, était placé sur un hêtre mort sur pied à 869 m d'altitude. Cet arbre était notamment colonisé par Rosalia alpina (Linnaeus, 1758) (Cerambycidae). Ce second piège a permis de capturer en outre plusieurs spécimens de Stictoleptura scutellata (Fabricius, 1781) (Cerambycidae) et un de Mesosa curculionoides (Linnaeus, 1760) (Cerambycidae), deux espèces rares. À noter toutefois que de nombreux chênes étaient présents à proximité de ce hêtre. Malgré le long intervalle entre les deux relevés, l'excellent état de conservation des deux spécimens capturés laisse supposer une date tardive de capture (plutôt en novembre qu'en septembre ou octobre). in Tetratoma desmarestii Latreille, 1807, un Tetratomidae nouveau pour la faune de Suisse (Coleoptera)

Un mâle (Fig. 1a) et une femelle ont ainsi été capturés au moyen de deux pièges d'interception (selon le modèle de Brustel 2012). Le premier piège était suspendu sur un chêne mort sur pied dans une chênaie thermophile de plaine, à une altitude de 499 m (Fig. 1b). Outre cette découverte, ce piège a permis de mettre en évidence d'autres espèces rares telles Clytus tropicus (Panzer, 1795) (Cerambycidae) et Camptorhinus simplex Seidlitz, 1867 (Curculionidae). Le second piège, situé à près de 5 km du premier, était placé sur un hêtre mort sur pied à 869 m d'altitude. Cet arbre était notamment colonisé par Rosalia alpina (Linnaeus, 1758) (Cerambycidae). Ce second piège a permis de capturer en outre plusieurs spécimens de Stictoleptura scutellata (Fabricius, 1781) (Cerambycidae) et un de Mesosa curculionoides (Linnaeus, 1760) (Cerambycidae), deux espèces rares. À noter toutefois que de nombreux chênes étaient présents à proximité de ce hêtre. Malgré le long intervalle entre les deux relevés, l'excellent état de conservation des deux spécimens capturés laisse supposer une date tardive de capture (plutôt en novembre qu'en septembre ou octobre).

opencc-by-4.0May 2020View details →

Fig. 1. a in Tetratoma desmarestii Latreille, 1807, un Tetratomidae nouveau pour la faune de Suisse (Coleoptera)

Fig. 1. a) Habitus du mâle de Tetratoma desmarestii capturé à Fully en 2019 (Photo Andreas Sanchez). b) Piège dans lequel a été capturé ce spécimen (Photo Yannick Chittaro).

zenodo36/100

Fig. 29 in Review of the Canadian Eustrophinae (Coleoptera, Tetratomidae)

Fig. 29. Canadian distribution of Eustrophopsis bicolor. Inset shows US distribution, by state.

zenodo36/100

Fig. 28 in Review of the Canadian Eustrophinae (Coleoptera, Tetratomidae)

Fig. 28. Canadian distribution of Eustrophus tomentosus. Inset shows US distribution, by state.

FIGURES 30–31 in Two new species of Cyanopenthe Nikitsky from Taiwan (Coleoptera, Tetratomidae, PentHinae)

FIGURES 30–31. The microhabitat: 30. Cyanopenthe taiwana sp. nov.; 31. C. leei sp. nov. (Fig. 31 photographed by Mr. Yi- Ting Chung).

FIGURES 17–19. Abdominal ventrite V in Two new species of Cyanopenthe Nikitsky from Taiwan (Coleoptera, Tetratomidae, PentHinae)

FIGURES 17–19. Abdominal ventrite V of female: 17. Cyanopenthe metallica (Champion, 1916); 18. C. taiwana sp. nov.; 19. C. leei sp. nov. Scale bars = 0.5mm.

FIGURES 15–16 in Two new species of Cyanopenthe Nikitsky from Taiwan (Coleoptera, Tetratomidae, PentHinae)

FIGURES 15–16. Abdomen: 15. Cyanopenthe taiwana sp. nov., paratype female; 16. C. leei sp. nov., holotype female. Scale bar = 1.0mm.

FIGURES 20–25 in Two new species of Cyanopenthe Nikitsky from Taiwan (Coleoptera, Tetratomidae, PentHinae)

FIGURES 20–25. Aedeagus (20, 23. ventral view; 21, 24. lateral view; 22, 25. dorsal view): 20–22. Cyanopenthe taiwana sp. nov.; 23–25. C. leei sp. nov. Scale bars = 0.5mm.

FIGURES 7–12 in Two new species of Cyanopenthe Nikitsky from Taiwan (Coleoptera, Tetratomidae, PentHinae)

FIGURES 7–12. Antenna: 7. Cyanopenthe metallica (Champion, 1916); 8. C. thailandica Nikitsky, 1998 (from Nikitsky, 1998); 9–10. C. taiwana sp. nov., 9: male, 10: female; 11–12. C. leei sp. nov., 11: male, 12: female. Scale bars = 0.5mm.